Résumé de l'arrière-plan
La diversité génotypique et cariogène de C. albicans
de la plaque dentaire des enfants sont mal entendu. Cette étude visait à explorer la diversité génotypique et cariogène de C. albicans
des enfants à la carie de la petite enfance et enfants sans carie.
Méthodes
échantillons de plaque dentaire de 238 enfants atteints de la carie de la petite enfance et à partir de 125 caries les enfants sans gluten ont été recueillies pour l'isolement de C. albicans. les résultats d'une méthode PCR basée sur ADNr 25S a été utilisé pour analyser les génotypes de C. albicans, et les souches de génotypes différents ont été testés à l'égard de acidogénicité et aciduricity.
Parmi 129 C. albicans
isolats , 79 (61,2%) appartenaient à génotype A. La fréquence de distribution des génotypes A et C ou génotypes B et C n'a montré aucune différence significative entre les enfants avec la carie et la carie libres enfants de la petite enfance (p = 0,178
et 0,148), alors que les génotypes A et B présentaient significativement différentes distributions (p = 0,010
). Aucune différence significative dans aciduricity ont été trouvés parmi les trois génotypes, mais le acidogénicité des génotypes B et C diffèrent significativement de celle de génotype A à pH 4,0.
Conclusions
La distribution génotypique de C. albicans
est associée avec caries des enfants, et le génotype peut être liée à son acidogénicité à pH 4,0.
Mots-clés
Candida albicans
cariogène caries de la petite enfance génotype Rongmin Qiu et Wenqing Li ont contribué également à ce travail.
Contexte
carie de la petite enfance (CPE) est définie comme la présence de 1 ou plusieurs dents cariées (lésions noncavitated ou cavitaires), les dents manquantes (à cause de caries), ou remplis les surfaces des dents dans toute dent primaire chez un enfant de 71 mois d'âge ou plus jeunes [1]. En raison de la forte prévalence chez les enfants de l'école primaire, ECC est un problème de grande préoccupation pour la santé publique. Étant donné que les caries sont causées par des micro-organismes de la plaque dentaire, la connaissance de la relation entre les micro-organismes dans la plaque dentaire et l'ECC dentaire des enfants est important pour la prévention de la CPE.
C. albicans
est souvent détecté chez les enfants ayant des caries dentaires, alors que cette levure est généralement absent chez les enfants sans caries-[2, 3]. Ces résultats fournissent des preuves indirectes de l'association de C. albicans
avec la carie dentaire. Dans notre étude précédente, la fréquence de C. albicans
isolé dans la plaque dentaire des enfants avec ECC a été confirmé à être plus élevé que celui des caries-libres (FC) enfants (44,1 vs 19,2%, χ
2 = 22,213, p & lt;.
0,001), qui a indiqué que C. albicans
est lié à ECC [4]
Certains rapports ont analysé la distribution génotypique de C. albicans
dans le biofilm dentaire des enfants de l'école primaire avec différents statuts caries et a constaté que un génotype spécifique était dominante dans le biofilm dentaire des enfants avec des caries sévères de la petite enfance (S-ECC) [5, 6]. Cependant, les corrélations entre les génotypes de différentes C. albicans et le cariogène de cette levure restent inconnus.
Les chercheurs ont constaté que les facteurs de virulence de C. albicans,
tels que l'invasivité et la résistance aux médicaments, sont liés à le génotype [7-9] et que acidogénicité et aciduricity sont C. albicans
facteurs de virulence importants pour les caries dentaires. Dans notre précédente étude, les souches de C. albicans isolées de la plaque dentaire des enfants ECC se sont révélés être plus aciduriques que ceux des enfants atteints de mucoviscidose, ce qui indique que le aciduricity des souches de C. albicans clinique est associée à une état dentaire de l'enfant. En revanche, aucune différence n'a été observée en ce qui concerne acidogénicité entre les deux groupes [10]. Peu importe, les relations de acidogénicité et aciduricity avec le génotype restent floues.
Dans cette étude, nous avons émis l'hypothèse que la distribution génotypique de C. albicans
de ECC et des FC enfants diffère et les génotypes L'exposition de ce que les différents C. albicans acidogénicité variable et aciduricity. Pour tester cette hypothèse, C. albicans
de la plaque dentaire de l'ECC et des FC enfants a été détecté par PCR à base d'ADNr 25S et le acidogénicité et aciduricity des génotypes de différentes C. albicans ont été évalués.
Méthodes
sujets: au total, 363 enfants âgés de 3-5 ans (moyenne ± SD, 3,2 ± 1,9) ont été recrutés au hasard à partir de quatre jardins d'enfants à Guangzhou, en Chine, à partir de février à avril 2009 (200 garçons et 163 filles ). Les enfants étaient en bonne santé et n'a eu aucune histoire de l'utilisation des antibiotiques pendant au moins 1 mois avant l'étude, et aucun de leurs dents permanentes avaient encore éclaté. Les enfants ont été assignés à l'un des deux groupes en fonction de leur statut de carie: le groupe ECC (n
= 238) ou le groupe CF (n = 125
). Les critères diagnostiques de ECC utilisés dans cette étude ont été proposées par Drury et al. [1]. Les parents des enfants ont été pleinement informés par écrit et le consentement éclairé pour la participation a été obtenue par les parents qui ont décidé de prendre la participation à l'étude.
L'approbation a été obtenue auprès du Comité d'éthique de la recherche de l'Université Sun Yat-sen avant le début de l'étude . la collection d'échantillons de prélèvement d'échantillons
a été effectuée le matin, et on a demandé aux enfants de ne pas manger pendant 2 h avant le prélèvement des échantillons. explorateurs dentaires stérilisées ont été utilisés pour la collecte de la plaque dentaire. Pour les enfants ECC, la plaque dentaire a été obtenu à partir de lésions carieuses dans les dents antérieures et /ou des dents molaires, puis mis en commun. Pour les enfants des FC, la plaque dentaire commun a été obtenu à partir des surfaces labiales sonores des dents antérieures supérieures et des surfaces buccales sonores des premières molaires primaires supérieures et inférieures. Tous les échantillons ont été conservés individuellement dans des tubes stériles contenant un bouillon d'infusion cerveau-coeur (HKM Co., Guangdong, Chine) et stockés sur de la glace; les échantillons ont été transportés au laboratoire dans les 2 h après le prélèvement.
C. albicans
isolement et l'identification
Tous les échantillons ont été dispersés par tourbillonnement pendant 30 s pour disperser des agrégats de levure. A 20 ml aliquote de chaque échantillon a été inoculé sur une plaque contenant un milieu sélectif (CHROMagar Candida, CAC, CHROMagar Co., Paris, France), puis cultivées pendant 48 h à 37 ° C [11]. Pour obtenir le plus grand nombre de génotypes représentatifs de C. albicans
dans un échantillon comme pratiquement possible, nous avons sélectionné 5 unités formant des colonies (CFU) par échantillon (environ 30-300 CFU par enfant) de chaque plaque CAC en utilisant une méthode décrite précédemment [12] pour réduire le biais de sélection et de maximiser l'aléatoire. Toutes les colonies de chaque échantillon ont été transférés à Sabouraud dextrose bouillon (SDB) (HKM Co., Guangdong, Chine) contenant du glycérol (30% v/v
) et conservés à -80 ° C.
Les méthodes de sous réserve de recrutement, la collecte de l'échantillon, et l'isolement de C. albicans et l'identification ont été décrits dans notre étude publiée précédemment [4]. Les isolats de C. albicans
étaient les isolats conservés de l'étude précédente de l'extraction
Méthode d'ébullition [4] de. L'ADN a été utilisé pour l'extraction de l'ADN. Les suspensions congelées de souches de C. albicans ont été mélangés, et une partie aliquote de 200 ul de chaque suspension d'échantillon a été ajouté à un tube Eppendorf et centrifugé pendant 8 min à 12 000 tours par minute. Après que le précipité a été broyé dans de l'azote liquide, on a laissé reposer pendant 5 minutes après que l'azote liquide a évaporé; cette procédure a été répétée en triple. Le précipité a été mis en suspension dans 30 pi de solution d'extraction de l'ADN, bouillies à 100 ° C pendant 10 minutes, et on centrifuge à 12 000 tpm pendant 3 minutes. Le surnageant a été stocké à -20 ° C jusqu'à l'amplification par PCR.
Amplification par PCR Les amorces CA-L INT (5'-ATAAGGGAAGTCGGCAAAATAGATCCGTAA-3 ') et CA-INT-R (5'-3-CCTTGGCTGTGGTTTCGCTAGATAGTAGAT ') ont été conçus comme décrit précédemment [13]. Le mélange d'amplification (volume total 50 ul) contenait 10 pi de tampon de PCR; 1 pi de chacun des dNTP, amorces et Taq polymérase (Promega, Madison, WI, USA); 34 ul de ddH 2O; et 2 pl de l'ADN matrice. Les conditions d'amplification étaient les suivantes: dénaturation initiale à 93 ° C pendant 5 min, 40 cycles de dénaturation à 93 ° C pendant 30 s, annelage d'amorce à 55 ° C pendant 45 s et extension à 72 ° C pendant 45 s, avec une extension finale à 72 ° C pendant 7 min. Pour l'identification, les produits de PCR ont été chargés sur 2% de gels d'agarose (Bio-Rad, Hercules, CA, USA) à 100 V pendant 30 min puis colorées avec une solution de bromure d'éthidium. Les séquences de C. albicans ont été classés en cinq génotypes selon le motif de la bande: le génotype A (450 pb), le génotype B (840 pb), le génotype C (450 et 840 pb), le génotype D (1080 pb), et génotype E (1400 pb) [14, 15]. préparation
Suspension
Vingt souches de C. albicans chaque
génotype ont été examinés pour la production d'acide et de tolérance acide. stocks congelés des souches ont été inoculées dans le SDB et cultivées à 37 ° C sous agitation (150 tpm) dans des conditions aérobies. Une fois que les cellules de levure ont été cultivées pendant 17 à 24 h, elles ont été récoltées en phase de croissance exponentielle tardive [16] et lavées deux fois avec une solution saline tamponnée au phosphate (PBS contenant 0,05 mM de Na 2HPO 4 /KH < sub> 2PO 4, pH 6,8). Les cellules ont été mises en suspension dans du PBS et ajustées à une densité optique (DO) de 1,0 à 540 nm (équivalant à 1 x 10 8 cellules /ml) pour la production d'acide et des tests de tolérance acides. La valeur de DO a été détectée en utilisant un spectrophotomètre ultraviolet (752S, Lengguang Tech. Co., Shanghai, Chine)
. Production d'acide et des essais de tolérance acide
stérile SDB (contenant du glucose 100 mM) a été utilisé pour la production d'acide et des essais de tolérance à l'acide; le pH du milieu a été ajusté à différentes valeurs initiales de pH de 7,0, 6,0, 5,5, 5,0, 4,5 et 4,0 (pH S-25, Shanghai Precision & amp; Scientific Instrument Co., Chine) en utilisant du HCl stérile 2 mM ou 4 mM NaOH [17]. En bref, des aliquotes de 50 ul des suspensions de chacun des différents génotypes à une DO 540 1,0 ont été ajoutés séparément à 5 ml de SDB, mises en culture pendant 48 h à 37 ° C, puis on centrifuge à 4500 tours par minute pendant 8 minutes à 4 ° C. Le pH du surnageant final a été détectée en utilisant un pH-mètre standard pour déterminer la formation d'acide. La ApH (égale à la valeur de pH initiale moins la valeur finale du pH) a été utilisé pour évaluer la production d'acide.
Afin d'évaluer la croissance dans des conditions acides, le précipité a été lavé 3 fois dans du PBS, puis dilué avec 2 ml de PBS. Ensuite, la turbidité a été mesurée à 540 nm (DO 540) à l'aide d'un spectrophotomètre.
Ces expériences ont été réalisées en triple. La ApH moyenne et OD 540 ont chacun été calculés à partir de trois échantillons répétés. Une valeur supérieure de ApH indique une plus grande capacité à produire de l'acide, et une plus grande OD 540 valeur indiquée meilleure croissance et aciduricity supérieur. L'analyse statistique
analyse des données a été réalisée en utilisant SPSS 16.0 (SPSS, Chicago, IL , ETATS-UNIS). La relation entre la diversité génotypique de C. albicans
et différentes expériences de caries a été analysé à l'aide des tests de chi carré. Pour éviter les erreurs de type I lorsque l'on compare plusieurs groupes via des tests de chi-carré, une correction critique
p- valeur requise a été appliquée, et le seuil
valeur p- a été fixé à 0,017 dans trois voies comparaisons. Les différences de ApH et OD 540 valeurs entre les trois génotypes de C. albicans
ont été analysées par ANOVA. Lorsqu'une différence significative n'a été trouvée entre les trois génotypes, la
méthode LSD-t a été utilisé pour analyser la différence entre les deux groupes, et le niveau de signification pour les tests statistiques a été fixé à 0,05. Résultats de la
C. albicans
Distribution génotypique
souches de C. albicans ont été isolés à partir de 129 sujets (35,5% des 363 enfants): 105 enfants avec ECC et 24 enfants des FC. Chaque enfant dont C. albicans
a été isolé a présenté un seul génotype, avec des génotypes A, B et C étant les trois génotypes détectés. Génotypes D et E ne sont pas détectés. Parmi les isolats, 79 (61,2%) appartenaient au génotype A; 20 (15,5%), au génotype B; et 30 (23,3%), au génotype C. Génotype A était le composant principal dans les deux groupes d'enfants (56,2% dans le groupe ECC, 83,3% dans le groupe CF); les fréquences de génotype B étaient de 19,0% et 0, et les fréquences du génotype C étaient de 24,8 et 16,7%, respectivement.
Les fréquences des différentes distributions génotypiques dans l'ECC et les groupes CF étaient significativement différents (p = 0,042
). Genotypes A et B ont été distribuées d'une manière significativement différente dans les deux groupes (p = 0,010
): génotype A présente une fréquence plus élevée dans le groupe CF, et le génotype B présente une fréquence plus élevée dans le groupe ECC. Les fréquences de distribution des génotypes A et C ou B et C génotypes ont montré aucune différence significative entre les deux groupes, et les valeurs de
P- étaient 0,178 et 0,148, respectivement (tableau 1 et la Fig. 1) La distribution génotypique des .Tableau 1 C. albicans
de la plaque dentaire des enfants ayant des caries expériences, n
(%)
Groupe
nombre total d'isolats
génotype A
génotype Ba
génotype Cb, c
p-
valeur
ECC
105
59 ( 56.2)
20 (19,0)
26 (24,8)
0,042
CF
24
20 (83,3)
0
4 (16,7)
totale
129
79 (61,2)
20 (15.5)
30 (23,3)
Une comparaison des fréquences génotypiques de A et B entre les groupes ECC et CF (p = 0,010
)
bComparison des fréquences génotypiques de A et C entre les groupes ECC et CF (p = 0,178)
cComparison des fréquences génotypiques de B et C entre ECC et groupes CF (p = 0,148
)
Fig. 1 Différents sous-groupes génotypiques de C. albicans
tel que déterminé par PCR. Lanes 17
, 21
, 22
et 23
Afficher le génotype A (le produit d'amplification PCR est d'environ 450 pb). Lanes 18
et 25
Afficher le génotype B (le produit d'amplification PCR est d'environ 840 pb). Lanes 19
et 24
Afficher le génotype C (deux produits d'amplification PCR: une bande est d'environ 450 pb, et l'autre bande est d'environ 840 pb)
acidogénicité et aciduricity
La croissance de C. albicans
a progressivement inhibé en tant que valeur initiale du pH du milieu a diminué; cependant, C. albicans
a pu croître à un pH de 4,0. Le pH initial de la culture diminuait, la DO 540 valeurs ont également diminué. La DO 540 valeurs pour les C. albicans
isolats des trois génotypes ne sont pas significativement différentes quand elles sont cultivées dans des milieux avec des valeurs de pH différentes (p & gt;
0,05) (tableau 2) .Table 2 OD valeurs des différents génotypes des isolats de C. albicans (moyenne ± SD)
génotype
valeur OD540
4.0
4.5
5.0
5.5
6.0
6.5
7.0
A (n = 20
)
1,41 ± 0,11
1,49 ± 0,10
1,52 ± 0,13
1,58 ± 0,14
1,58 ± 0,11
1,62 ± 0,14
1,63 ± 0,14
B (n = 20
)
1,49 ± 0,13
1,53 ± 0,14
1,55 ± 0,14
1,57 ± 0,08
1,63 ± 0,10
1,65 ± 0,13
1,64 ± 0,16
C (n = 20
)
1,49 ± 0,10
1,50 ± 0,07
1,54 ± 0,24
1,60 ± 0,15
1,61 ± 0,14
1,64 ± 0,14
1,64 ± 0,14
p-
value
0.187
0.256
0.282
0.496
0.145
0.231
0.244
Le pH initial de la culture diminue, la production d'acide par les souches de C. albicans tous été réduite. Le pH final de toutes les cultures variait de 3,16 à 3,76. Toutes les souches présentaient les valeurs les plus élevées de ApH à pH 7,0. Parmi les trois génotypes, aucune différence significative n'a été trouvée pour ApH lorsqu'elles sont cultivées dans des milieux avec des valeurs de pH de 7,0, 6,5, 6,0, 5,5, 5,0, et 4,5 (p & gt;
0,05). Toutefois, des différences significatives ont été trouvées pour ApH lorsque les isolats ont été cultivés dans des milieux à pH 4,0 (p = 0,029
). Après les comparaisons par paires, aucune différence significative n'a été observée ApH entre les génotypes B et C (p = 0,836
) lorsqu'elles sont cultivées dans des milieux à un pH de 4,0. En revanche, des différences significatives ont été observées entre les génotypes A et B (p = 0,048
) et entre les génotypes A et C (p = 0,019
) (tableau 3) .Table 3 acides formation capacités des différents génotypes de C. albicans de les isolats valeur (moyenne ± SD)
Génotype
△ pH
4.0
4.5
5.0
5.5
6.0
6.5
7.0
A (n = 20
)
0,84 ± 0,12
1,11 ± 0,11
1,46 ± 0,22
1,86 ± 0,19
2,37 ± 0,27
2,83 ± 0,20
3,27 ± 0,21
b (n = 20
)
0,91 ± 0.09a, b
1,21 ± 0,20
1,55 ± 0,12
1,82 ± 0,39
2,49 ± 0,24
2,87 ± 0,40
3,39 ± 0,23
C (n = 20
)
0,93 ± 0.03c
1,21 ± 0,08
1,64 ± 0,05
1,93 ± 0,26
2,57 ± 0,11
2,98 ± 0,15
3,38 ± 0,15
p-
value
0.029
0.093
0.059
0.169
0.150
0.192
0.197
Une comparaison des capacités de formation d'acides de C. albicans
isolats entre le génotype A et B en culture à un pH de 4,0 (p = 0,048
)
bComparison des capacités de formation d'acides de C. albicans
isole entre le génotype B et C cultivé à un pH de 4,0 (p = 0,836
)
cComparison des capacités de formation d'acides de C. albicans
isole entre le génotype A et C en culture à un pH de 4,0 (p = 0,019
)
Discussion
C. albicans
est détecté plus fréquemment chez les enfants ayant des caries dentaires, mais est généralement absente dans enfants sans carie. Cette levure peut facilement adhérer aux tissus durs dentaires chez les humains et former des biofilms. Cette levure produit également de l'acide en métabolisant des sucres et des glucides alimentaires, ce qui provoque la dissolution des cristaux d'hydroxyapatite de l'émail et la dentine [16, 18]. C. albicans
produit également de l'acide à une valeur de pH inférieur à 4,0 et présente une tolérance à l'acide fort [17].
Afin d'évaluer l'identité génotypique des souches de C. albicans, une méthode basée sur la PCR 25S était utilisé pour la classification. À ce jour, cinq génotypes de C. albicans
ont été identifiés, les génotypes désignés A, B, C, D et E. Les génotypes A, B et C peuvent être détectés dans la muqueuse buccale [15] et la plaque dentaire [ ,,,0],5, 6] des enfants. Génotype D se trouve dans la poche parodontale systémique des patients en bonne santé avec une parodontite [19], alors que le génotype E est rarement présent dans la cavité buccale. Les résultats de cette étude ont révélé trois génotypes de C. albicans
souches chez les enfants examinés, les génotypes A, B et C, avec la souche dominante étant le génotype A. Ces résultats sont similaires à un précédent rapport montrant que C. albicans
génotype A est la souche dominante dans la plaque dentaire des enfants [5, 6].
les génotypes de C. albicans
des cavités orales de différents patients varient considérablement probablement parce que les conditions locales orales des patients sont uniques [15]. Dans la présente étude, les génotypes B et C ont été trouvés plus fréquemment dans le groupe ECC que dans le groupe des FC. En particulier, le génotype B n'a pas été isolé du groupe CF, alors que le génotype A était plus fréquente dans ce groupe. Des résultats similaires ont été rapportés dans les études antérieures, avec des génotypes B et C seulement détecté dans le site cariée, pas dans le site de son, des enfants S-ECC [5] et le génotype B seulement détectée chez les enfants S-ECC [6]. Ces différences dans la distribution génotypique de C. albicans
peuvent être liées à des différences dans les sites d'échantillonnage [5]. Pour les enfants ECC, les échantillons ont été obtenus à partir de lésions carieuses, alors que les échantillons pour les enfants atteints de mucoviscidose ont été obtenus à partir des surfaces solides. Dans les lésions carieuses, hygiène buccale et de haute sucre concentrations mauvaises dans les cavités auraient une plus grande influence sur la colonisation de C. albicans.
Nos résultats suggèrent que différents environnements pourraient faciliter la colonisation de différents génotypes de C. albicans
et indique que la distribution des génotypes de C. albicans diffèrent chez les enfants ayant des caries expériences.
dans cette étude, la croissance des souches de C. albicans a été progressivement inhibée avec un pH initial décroissante de la moyenne, et les souches de C. albicans tous sont capables de croître à un pH de 4,0 et produire de l'acide. Cependant, les trois génotypes ne diffèrent pas significativement à l'égard de la croissance à une valeur de pH, ce qui indique que les trois génotypes avaient la tolérance de l'acide similaire et étaient tous capables de survivre dans un environnement plus acide tout en continuant à produire de l'acide. Dans cette étude, les capacités acidifiants des génotypes de C. albicans B et C étaient significativement plus élevés que la capacité acidifiante de génotype A à un pH de 4,0 mais pas à un pH de 4,5 à 7,0. Ce résultat indique que le génotype de C. albicans
était liée à son acidogène au pH 4,0. En particulier, la valeur du pH de la lésion carieuse est généralement inférieure à celle de la surface solide. Les isolats des génotypes B et C ont été obtenus à partir de lésions carieuses, alors que certains isolats du génotype A ont été obtenus à partir de surfaces solides. Par conséquent, les isolats de génotypes B et C serait capable de survivre dans un environnement plus acide.
En outre, C. albicans
isolats du génotype A ont été détectés plus fréquemment chez les enfants ECC, et le génotype A était moins acidogène au pH 4,0 de génotypes Une des raisons de ce constat B et C est que les isolats de C. albicans ont été obtenus auprès d'enfants ayant un statut différents des caries. C. albicans
isole des enfants ECC ont été trouvés pour être plus acidogène que ceux des enfants des FC lorsqu'elles sont cultivées à pH 4,0 dans notre précédente étude [10]. Dans la présente étude, le génotype A isolats ont été obtenus à partir de deux enfants ECC et les enfants des FC, alors que tout le génotype B isole et la plupart des isolats C de génotype ont été obtenus chez les enfants des FC.
Que cette diversité génotypique est liée à la virulence de C. albicans
reste incertain. Chez les patients atteints d'infections profondes, le génotype A a été montré que l'isolat la plus envahissante, alors que la plupart des isolats non invasives appartiennent à des génotypes B et C [7]. Une autre étude a rapporté que de divers échantillons cliniques, le génotype C est l'isolat plus invasive, alors que la plupart des isolats non invasifs appartiennent au génotype A [8]. Cependant, chez les patients atteints de candidose hématogène, la distribution génotypique de C. albicans
n'a pas été liée à invasivité [20]. Dans la présente étude, les génotypes B et C ont été détectés plus fréquemment dans le groupe ECC que dans le groupe des FC, et les génotypes B et C ont montré des capacités de formation d'acide significativement plus élevés que le génotype A lorsqu'elles sont cultivées à pH 4,0. En revanche,
aucune relation n'a été trouvée entre la distribution génotypique de C. albicans
et la tolérance de l'acide. Par conséquent, d'autres études doivent être menées pour étudier la relation entre cariogène et le génotype de C. albicans
. Conclusions
Dans cette étude, les génotypes B et C ont été trouvés plus fréquemment dans le groupe ECC que dans le groupe CF, ce qui indique que la distribution des génotypes de C. albicans diffère chez les enfants ayant des caries expériences. Les capacités acidifiants des génotypes de C. albicans B et C étaient significativement plus élevés que celui du génotype A, lorsqu'il est cultivé à un pH de 4,0, et ce résultat a indiqué que le génotype de C. albicans
est lié à un pH acidogénicité . Remarques
Rongmin Qiu 4.0 et Wenqing Li ont contribué également à ce travail
abréviations
C. albicans
:. albicans
Candida
CF:
caries sans
CFU:
unités formant des colonies
ECC:
caries de la petite enfance
OD:
densité optique
SDB:
bouillon dextrose Sabouraud
S-ECC:
caries sévères de la petite enfance
Déclarations Remerciements
les auteurs expriment leur gratitude aux directeurs et enseignants des écoles maternelles et à les enfants et leurs parents pour leur coopération. Cette étude a été partiellement financé par le Fonds national chinois des sciences naturelles (n ° 81272554), le Fonds du programme Guangdong, la science et la technologie de la Chine (n ° 2010B050700004), et le Fonds des sciences de Guangdong naturelles de la Chine (n ° 8151008901000076).
AccessThis open article est distribué sous les termes de la Creative Commons attribution 4.0 License internationale (http:. //creativecommons org /licences /par /4. 0 /), qui permet une utilisation sans restriction, la distribution et la reproduction sur tout support, à condition que vous donniez le crédit approprié à l'auteur (s) original et la source, fournir un lien vers la licence Creative Commons, et indiquer si des modifications ont été apportées. Dédicace renonciation Creative Commons Public Domain (http:. //Creativecommons org /publicdomain /zéro /1. 0 /) applique aux données mises à disposition dans cet article, à moins d'indication contraire
concurrence. intérêt
Aucun des auteurs a des intérêts concurrents. le QRM de contributions des
auteurs, LWQ et ZW conçu l'étude, a mené les expériences, a analysé les données, et a écrit le manuscrit. LWQ et LY recueilli des échantillons de plaque dentaire, ont analysé les données et les interpréter les résultats. YDS et ZW conçu et supervisé l'étude et ont fourni une révision critique du manuscrit pour le contenu intellectuel important. QRM et LWQ ont contribué également à ce travail. Tous les auteurs ont lu et approuvé le manuscrit final.
