Résumé de l'arrière-plan
Le but de cette étude in vitro était d'étudier le potentiel de l'élimination du biofilm dans les régions de dents interdentaires utilisant intervallique nettoyage avec un irrigateur buccal ou une brosse à dents sonique.
Méthodes
biofilms Trois-espèces (mutans
Streptococcus (OMZ 918), Streptococcus oralis
SK 248 (OMZ 60), Actinomyces naeslundii
( OMZ 745)) ont été cultivées sur des disques d'hydroxyapatite pendant 3 jours dans un milieu de culture. Toutes les 24 heures, les échantillons ont été mis en incubation pendant 15 min dans une solution de résazurine (i.e. le milieu de culture et 10% v /v alamarBlue®) pour mesurer l'activité métabolique avec un spectrophotomètre de fluorescence en unités de fluorescence relatives (RFU) au niveau de référence. Ensuite, les échantillons ont été fixés dans les dispositifs de maintien de interdentaires et ont subi un traitement avec un hydropulseur (WF; Waterpik® Sensonic WP-100E), une brosse à dents sonique active (WPa), ou une brosse à dents sonique inactive (WPi; Waterpik® Sensonic SR-3000E) 10 s (n = 18
/groupe). biofilms ont servi de témoins non traités (CO). Après le traitement, l'activité bactérienne a été réévaluée, et les spécimens ont été re-cultivées dans un milieu frais pendant 24 h jusqu'à ce que la procédure de nettoyage suivante. Au total, le nettoyage a été répété à des intervalles de trois jours de traitement (D1, D2, D3). D3 après, les images ont été prises au MEB (n = 8
) et CFU a été mesurée (n = 3
). L'activité métabolique a été analysé pour chaque disque séparément, les valeurs RFU ont été en moyenne pour d1 de comparer la stabilité du biofilm initial, et les ratios de valeurs de référence et de post-traitement ont été comparés. Les résultats ont été analysés en utilisant ANOVA avec le test post-hoc Scheffé ou Kruskal-Wallis avec post-hoc test de Mann-Whitney.
De base médian RFU valeurs
Résultats de d1 ont donné lieu à 7821,8 RFU (intervalle interquartile = 5114,5) . Le plus élevé de réduction de l'activité métabolique a été enregistrée de manière significative pour l'hydropulseur utilisé pendant 10 s (activité résiduelle par d1 jour: WF 17,9%, WPa 58,8%, WPi 82,5%, CO 89,6%; d2: WF 36,8%, WPa 85,2%, WPi 82,5%, CO 90,0%; d3:. WF 17,2%, WPa 79,6%, WPi 96,3%, CO 116,3%). des images SEM d'échantillons non traités (CO) et des échantillons traités avec la brosse à dents sonique (EPW et WPI) ont montré des quantités énormes de biofilm, tandis que les échantillons d'irrigants traités par voie orale (WF) a révélé quasiment pas de bactéries. les données CFU ont confirmé les graduations entre les groupes.
Conclusions
Nettoyage des régions interproximales obtenu plus de succès avec un irrigateur buccal par rapport à l'utilisation d'une brosse à dents sonique. (350/350 mots)
Mots-clés
alamarBlue élimination test intervallique biofilm Interproximal système d'irrigation orale Sonic brosse à dents électronique matériel supplémentaire biofilm
La version en ligne de cet article (doi:. 10 1186 /s12903-015- 0079-6) contient du matériel supplémentaire, qui est disponible pour les utilisateurs autorisés.
Contexte
caries et parodontite sont causés par les biofilms bactériens, accumuler sur les surfaces des dents et des tissus mous de la bouche. Comme la plupart des appareils d'hygiène buccale ne parviennent pas suffisamment toutes les niches et les angles de la cavité buccale mécaniquement, les régions interdentaires sont souvent affectés par les propriétés de la pâte dentifrice suspension et les forces hydrodynamiques produites pendant le brossage des dents. Pour déterminer les effets hydrodynamiques les plus élevées, de nombreuses études ont étudié l'effet de la dent sonique et manuel de brossage sur les biofilms ainsi que les différences au sein de différents types de brosses à dents soniques. Selon le type de brosses à dents soniques, des brosses à dents d'un côté à côté résultent le plus souvent en plus la réduction de biofilm de 50%, tandis que les brosses à dents multidimensionnelles supprimer moins biofilm [1-3]. En comparant différentes brosses à dents soniques côte à côte entre l'autre montre des différences significatives entre les modèles allant de 9 à 80% [4]. Cependant, jusqu'à présent, la plupart des enquêtes sur le soi-disant «sans contact biofilm retrait" ont été effectuées n'utilisent des appareils interdentaires, mais par exemple Brosses à dents soniques, installées à des distances définies directement ajustées vers le centre de la surface du disque revêtu d'un biofilm [3-7]. En utilisant cette approche, les forces hydrodynamiques, formées par les dispositifs oraux ont un accès direct à la surface de biofilm et de grève, en fonction de la distance, avec pleine intensité. Bien que décrivant une approche de brossage sans contact, il pourrait encore différer des situations réelles interdentaires. Adams et. al [1] a étudié l'effet de l'élimination monospécifique-biofilm en utilisant un modèle interproximal avec différentes distances de l'extrémité des poils. L'analyse des vitesses de bulle émergente des différentes brosses à dents soniques, on estime les valeurs des contraintes de cisaillement entre 0,5 et 0,9 Pa, ce qui entraîne une réduction de biofilm jusqu'à 57% d'un côté à côté et 16% pour les brosses à dents d'oscillation tournante à une distance de 0 - 5 mm. Frey (2012) a développé un appareil dentaire interproximal avec un capteur de contrainte de cisaillement intégré et analysé la contrainte de cisaillement dans les distances interdentaires de 0,2 mm en utilisant différentes brosses à dents d'un côté à côté [8]. En fonction du type de brosse à dents et son mode d'action, les valeurs de contrainte de cisaillement allant jusqu'à 10 Pa ont été mesurés. Cependant, plus marquées des valeurs de contrainte de cisaillement avec élimination ultérieure de biofilm peuvent être évalués par un écoulement de fluide plus élevée produite par les systèmes d'irrigation orale (SRO). Les études portant sur l'utilisation de jets d'eau dentaires indiqué médiateurs pro-inflammatoires réduites, comme l'IL-1ß et PGE
2 et le retrait de la plaque salivaire biofilm plus de 99%, indépendamment de la pointe de jet d'eau utilisée [9-11]. Alors que les SRO ont été analysées principalement dans les essais cliniques, la détermination du résultat sur la réduction des saignements, la gingivite et la plaque biofilm, l'enlèvement interproximal biofilm n'a pas encore été étudiée [12, 13].
Par conséquent, le but de cette étude in vitro était de étudier l'effet d'un hydropulseur et une brosse à dents côte à côte sur multispécifique biofilm suppression à l'aide d'un dispositif dentaire interproximal. De plus, les cycles de traitement utilisant les SRO ou une brosse à dents sonique ont été répétées à des intervalles de 24 h pour simuler et analyser l'effet de répéter des modèles d'hygiène buccale.
Méthodes
formation de biofilms
souches bactériennes ont été obtenus à partir de l'Institut pour Oral Biologie, Section de microbiologie orale et immunologie générale, Université de Zürich, Zürich, Suisse. Avant la formation de biofilms, les souches (de Streptococcus mutans
OMZ 918, Streptococcus oralis
OMZ 607, Actinomyces naeslundii
OMZ 745) ont été acquises à partir de précultures strié de sang gélose Columbia moutons (ACEP) plaques (bioMérieux, Marcy l 'Etoile, France). Les colonies ont été propagés planctoniques dans un substrat composé de 30% de la solution de salive et 70% modifié milieu fluide universel (Mfum) [14] séparément sur une bascule à 37 ° C dans des bocaux en utilisant du gaz-pak pour créer des conditions anaérobies (Genbox anaer et GENbag anaer , bioMérieux, Marcy l'Etoile, France). Par conséquent, la salive fraîche a été acquise par un donneur sain et centrifugé deux fois pendant 30 minutes par 13400 rpm. Suite à l'avis du comité d'éthique du canton de Zurich, en Suisse, aucune approbation éthique est nécessaire pour le don de la salive comme expliqué ci-dessus (no. 0324/2013 et non. 50/14). Le culot a été enlevé à chaque fois et le surnageant restant a été dilué 1: 2 dans du chlorure de sodium (NaCl 0,9%) avant la filtration stérile (filtres de syrenge TPP avec 0,2 um pores, Faust, Schaffhausen, Suisse). La solution de la salive résultant a été utilisé dans toutes les expérimentations. Fum, un milieu de bouillon à base de tryptone-levure bien établi a été décrit par Loesche et al. [15]. FUM contenait (par litre d'eau distillée): 10 g de tryptone, 5 g d'extrait de levure, 3 g de glucose, 2 mg d'hémine, 1 mg de ménadione, 0,5 g de chlorhydrate de cystéine, 0,1 g de dithiothréitol, 2,9 g de 0,9% de NaCl, 0,5 g de Na 2CO 3, 1 g de KNO 3, 0,45 g de K 2HPO 4, 0,45 g de KH 2PO 4, 0,9 g de (NH 4) 2SO 4, et 0,188 g de MgSO 4 * 7H20. Il a été modifié en complétant le tampon de Sørensen /l 67 mmol jusqu'à un pH final de 7,2. Le glucose a été remplacé par 3 g d'un mélange 1: 1 de glucose et de saccharose. La modification utilisée dans cette étude a été adoptée à partir des protocoles de Zurich biofilm [14]. Au bout d'environ 6-7 h, les solutions bactériennes ont été ajustées à la densité optique (DO550) de 1 et mélangés dans un tube d'inoculum. Pour quantifier l'inoculum par ml, unités formant colonie (UFC) ont été étalées sur des plaques ACEP et incubés en anaérobiose dans des bocaux en utilisant du gaz-pak (t = 2 d). Dans l'intervalle, les disques d'hydroxyapatite frittés stériles (Ø 5 mm, Clarkson Chromatography Products, South Williamsport, États-Unis) ont été incubés dans 800 pi de solution non stimulée par la salive pendant 4 h à une légère agitation pour former une pellicule (100 rpm à température ambiante) . Pour la formation de biofilms, les disques pelliculaires revêtues ont ensuite été placés dans de nouvelles 24 puits des plaques de culture cellulaire de polystyrène et incubés avec 1 ml de l'inoculum préparé pendant l'agitation douce pendant 24 h dans des bocaux à 37 ° C en utilisant du gaz-pak (Genbox anaer et GENbags anaer, bioMérieux, Marcy l'Etoile, France). Le milieu a été rafraîchi par jour avant les procédures de traitement et directement après le traitement par le transfert des échantillons dans de nouvelles plaques pleines de milieu frais (solution de salive à 30% + 70% Mfum). pH a été contrôlé par jour dans le milieu du jour au lendemain juste après le premier changement de média en utilisant un pH-mètre (Mettler-Toledo Facile Cinq, Mettler-Toledo AG, Schwerzenbach, Suisse) Traitement
Specimens de. ont été divisés en quatre groupes. Trois expériences indépendantes ont été réalisées pour obtenir n
= 18 échantillons par groupe (première expérience n
= 4, second n
= 6, dernière expérience n
= 8 échantillons par groupe). Chaque expérience est composée de trois jours de traitement (D1, D2, D3). Avant chaque traitement, les mesures de l'activité métabolique ont été effectuées pour obtenir des valeurs de base pour chaque échantillon. Ensuite, les échantillons ont été placés avec précaution dans un dispositif interdentaire avec 2 spécimens dans une distance de 0,5 mm face à face (Fig. 1). Le dispositif de brossage pour les brosses à dents électriques a été construit dans une coopération entre l'Institut de la dynamique des fluides, ETH Zürich et le Département de dentisterie préventive, parodontologie et Cariologie de l'Université de Zurich, en Suisse. Pour l'expérimentation, 25 ml d'eau de 36 ° C a été introduit à la pipette dans le dispositif pour couvrir les régions interdentaires et les spécimens. Pour le groupe WF, l'hydropulseur (Waterfloss, Waterpik® Sensonic WP-100E) a été ajustée en utilisant le JT-100E classique Jet Tip à un angle de 90 ° vers la région interdentaire tel que décrit dans les informations du fabricant. Le contrôle de la pression a été placé au niveau 10 (pression d'eau la plus élevée) et activé pendant 10 s. Ensuite, les échantillons ont été soigneusement prélevés à partir du dispositif interdentaire et restauré en plaques avec 0,9% de NaCl. Pour le groupe WPa, la brosse à dents sonique (Waterpik® Sensonic SR-3000E) a été ajusté sur l'appareil en utilisant la tête de brosse standard respective avec une charge de la tête de brosse sur la zone interdentaire de & lt; 0,9 N, telle que mesurée par les brosses à dents soniques (charge totale de 70 ± 5 g) [2, 16]. Le brossage a été effectuée pendant 10 s dans des conditions statiques. Pour les spécimens du groupe WPi, les procédures ont été répétées pour les brosses inactivés (puissance hors). Spécimens sans traitement ont été utilisés comme groupe témoin (CO). Figue. 1 un projet de dispositif de maintien utilisé avec une charge réglable (*); Interproximale position de l'échantillon dans la chambre (flèche). dispositifs oraux peuvent être positionnés perpendiculairement aux spécimens Fixated, comme illustré dans b) pour la brosse à dents sonique et c) pour l'hydropulseur
dosage alamarBlue et unités formant des colonies
Avant l'expérimentation, le dosage alamarBlue a été validé en préliminaire essais [voir les fichiers supplémentaires 1]. L'inoculum décrit ci-dessus a été diluée à 1: 2 dans du tampon phosphate salin à sept séries. Des échantillons de chaque série de dilutions ont été déterminées en unités formant des colonies, entraînant une série de dilutions de 5,5 à 350 × 10 6 UFC /ml. Dix échantillons de chaque série ont ensuite été utilisées pour les mesures cinétiques. Par conséquent, les échantillons ont été incubés dans des puits contenant 10 vol.% Cellule alamarBlue Viabilité Assay Reagent (Life Technologies, Zug, Suisse) et mesurées dans un spectrophotomètre avec lecteur de plaques à 560 nm d'excitation /585 nm émission à 37 ° C (Spectramax M2, Molecular Devices, Bucher Biotec, Bâle, Suisse). Les mesures ont été effectuées toutes les 15 minutes pendant 2 h. Les unités de fluorescence relative mesurée de chaque dilution ont été tracées en fonction du temps d'incubation. Les résultats de ces essais préliminaires ont montré des taux initiaux constants de la réaction enzymatique dans une plage d'environ 30% de la conversion totale de substrat pour chaque courbe de dilution [voir fichier supplémentaire 1]. Pour obtenir des mesures dans la plage d'augmentation linéaire pour les expérimentations en cours, le temps d'incubation dans la solution alamarBlue a été fixé à 15 min.
Pour l'expérimentation, biofilm disques d'hydroxyapatite revêtus ont été d'abord stockés dans une nouvelle plaque de puits avec 0,9% NaCl pour éviter de plus en plus au cours du traitement plus loin. Ensuite, les échantillons ont été transférées avec soin dans des plaques à 96 puits et mises en incubation dans 300 pi de solution alamarBlue contenant du milieu frais (solution de salive à 30% + 70% Mfum) avec 10% en vol. AlamarBlue dans des conditions anaérobies. En outre, deux puits ont été remplis de solution à blanc de alamarBlue (sans échantillons) et un puits a été rempli avec des bactéries centrifugés de la inoculum planctoniques en solution alamarBlue pour obtenir des valeurs pour l'activité métabolique maximale. Au bout de 15 min, 200 ul de chaque solution a été alamarBlue pipetés dans de nouvelles plaques à 96 puits et l'activité métabolique a été mesurée dans un spectrophotomètre lecteur de plaque à 560 nm d'excitation /émission de 585 nm. Les unités relatives de fluorescence résultante (RFU) ont été définies comme des valeurs de référence ou de prétraitement RFU. Après les mesures, les échantillons ont été stockés dans 0,9% de NaCl et d'autres expériences ont été réalisées (traitements utilisant les différents dispositifs oraux). Ensuite, les valeurs de post-traitement ont été obtenus en utilisant le dosage alamarBlue comme décrit précédemment. Après RFU-mesures, les échantillons ont été transférés au substrat frais pour permettre la repousse et se retirèrent avec les procédures identiques 24 h plus tard. Par conséquent, les échantillons ont été distribués dans les mêmes groupes. Au total, chaque échantillon a subi trois cycles de traitement (d1, d2, d3).
Après le dernier traitement et la mesure à l'aide alamarBlue (d3), trois échantillons de chaque groupe ont été analysées en utilisant en outre UFC. Par conséquent, les échantillons ont été agités par tourbillonnement dans 1 ml de NaCl à 0,9% pendant 2 minutes et insonifié pendant 5 s. Chaque suspension bactérienne a été diluée dans 0,9% de NaCl et étalée sur le sang de la gélose Columbia moutons (SCEM) plaques (bioMérieux, Marcy l'Etoile, France). plaques ACEP ont ensuite été incubés dans des bocaux à 37 ° C, en utilisant -paks de gaz (GENbag anaer, BioMérieux, Marcy l'Etoile, France) pendant 2 jours.
balayage au microscope électronique d'analyse
Pour SEM, deux échantillons par groupe (n = 8
) ont été utilisés après le dernier cycle de traitement (d3). Les échantillons ont été lavés avec une solution de NaCl à 0,9% et fixés dans une solution de glutaraldéhyde à 4% (dans 0,1 M de tampon phosphate de sodium de potassium, pH 7,0) pendant au moins 24 heures. La déshydratation a été réalisée progressivement (2 x 15 min dans de l'éthanol à 50% vol., 2 x 15 min dans de l'éthanol à 70% vol., 2 x 15 min dans de l'éthanol à 80% vol., 2 x 15 min dans de l'éthanol à 90%, 3 x 20 min dans de l'éthanol à 96% et 2 x 60 min dans de l'éthanol absolu). Avant l'or par pulvérisation le revêtement du séchage au point critique a été réalisée. Les échantillons de tous les groupes ont été examinés après la dernière étape de traitement répété périodiquement (d3). En outre les images de spécimens sans bactéries ont été prises. Grossissements de 45x ont été prises à l'image des surfaces d'échantillons et 500x pour afficher les caractéristiques de surface plus détaillées. L'analyse statistique
L'activité métabolique a été analysée séparément pour chaque disque, et le rapport de post-traitement aux valeurs de base ont été comparés à l'intérieur de la jours de traitement (d1, d2, d3). L'analyse des données a été réalisée en utilisant ANOVA avec le test post-hoc de Scheffé, ou Kruskal-Wallis avec post-hoc test de Mann-Whitney.
De base médian RFU valeurs de résultats de d1 (tous les groupes) ont donné lieu à 7.821,8 (intervalle interquartile = 5114,5) RFU. RFU valeurs de base de d2 (pré-traitement RFU) ont montré une activité métabolique supérieure à d1, quel que soit le groupe de traitement (moyenne ± écart-type, WF: 12045 ± 4414, WPa: 11832 ± 4331, WPi: 10600 ± 3362, CO: 10508 ± 3,153). Baseline RFU valeurs de d3 ont montré une diminution de l'activité métabolique par rapport à d1 et d2 (moyenne ± écart-type, WF: 5864 ± 3974, WPa: 6768 ± 3753, WPi: 6531 ± 4490, CO: 6878 ± 4093; tableau 1). Post-traitement RFU valeurs étaient liées à RFU-valeurs de référence pour le calcul de l'activité métabolique résiduelle en pourcentage. Significativement plus forte réduction de l'activité métabolique par rapport à la ligne de base a été montré pour le groupe WF (irrigateur orale) pendant 10 s pour tous les cycles de traitement (d1: 17,9%, d2: 36,8% et d3: 17,2%). Le WPa-groupe (brosse à dents sonique actif) a montré significativement réduit l'activité métabolique sur d1, alors qu'aucune réduction significative a été mesurée sur le traitement d2 et d3 du cycle (d1: 58,8%, d2: 85,2%, d3: 79,6%). Les échantillons traités avec la brosse à dents sonique inactive (WPI) et les échantillons non traités (CO) ne présentaient aucune diminution significative de l'activité du biofilm du tout (d1: WPi 82,5% CO 89,6%; d2: WPi 82,5% CO 90,0%; d3: WPi 96,3 %, CO 116,3%; fig. 2). électronique à balayage des images microscopiques du groupe WF ont révélé des surfaces presque sans biofilm avec des bactéries résiduelles et de la matrice partiellement tondu-off sur les zones extérieures (Fig. 3 a et b). Images du wpa-, WPi- et CO-groupe ont montré d'énormes quantités de biofilm avec des pics d'îles et d'agrégats (Fig. 3) bactériennes. UFC données médianes ont donné lieu à 1,0 x 10 ^ 6 (WF), 2,2 x 10 ^ 9 (EPW), 1,1 × 10 ^ 11 (WPI) et 1,8 x 10 ^ 11 (CO). Deux spécimens du groupe CO étaient indénombrable (& gt; 10 ^ 11;. La figure 4) .Table 1 moyenne ± écart-type de pré et post-traitement dans les unités de fluorescence relative [RFU] pour les différents dispositifs aux points de temps d1-d3
Groupes de
traitement jours
pré-traitement [RFU] moyenne ± SD
post-traitement [RFU] moyenne ± SD
d1
WF
7077 ±
2564
1498 ±
1484
WPa
7384 ±
2434
4715 ±
2841
WPi
6832 ±
3202
5944 ±
3244
CO
6669 ±
3157
5930 ±
2845
d2
WF
12045 ±
4414
4540 ±
2451
WPa
11832 ±
4331
9966 ±
3414
WPi
10600 ±
3362
8953 ±
3788
CO
10508 ±
3153
9609 ±
3564
d3
WF
5864 ±
3974
885 ±
564
WPa
6768 ±
3753
4627 ±
2087
WPi
6531 ±
4490
4757 ±
1832
CO
6878 ±
4093
5979 ±
2318
WF
hydropulseur, brosse à dents sonique WPa actif, sonic inactif brosse à dents WPi, CO
contrôle
Fig. 2 Boxplots d'activité résiduelle métabolique% des RFU-valeurs de base de différentes conditions expérimentales avec la médiane (ligne horizontale intérieure), 1er et 3e quartile (inférieur et ligne de boîte supérieure) et 10e et 90e percentile (des favoris). WF = hydropulseur; WPa = Brosse à dents sonique, actif; WPi = Brosse à dents sonique, inactive; CO = Contrôle. Des différences significatives sont illustrés ci-dessus boxplots correspondant
Fig. 3 images MEB de tous les groupes après le dernier traitement (d3). Spécimens après traitement avec le WF hydropulseur (a, b), la brosse à dents sonique actif WPa (c, d), la brosse à dents sonique inactive WPi (e, f), le groupe de contrôle CO sans traitement (g, h) et les échantillons sans bactéries (i, j). Les zones à tondue-off biofilm sont indiqués en a) et b). Grossissements de 45x (a, c, g, e, I; échelle bar = 100 um) et 500x (b, d, f, h, j; barre d'échelle = 10 pm) ont été utilisés
Fig. 4 Boxplots de bactéries résiduelles après d3 dans ln UFC /ml (n = 3
par groupe). Deux spécimens du groupe CO ont révélé des plaques indénombrables (& gt; 10 ^ 11). La CFU médiane (ligne horizontale intérieure) a donné lieu à 1,0 × 10 ^ 6 (WF), 2,2 x 10 ^ 9 (WPa), 1,1 × 10 ^ 11 (WPi) et 1,8 × 10 ^ 11 (CO). WF = hydropulseur; WPa = Brosse à dents sonique, actif; WPi = Brosse à dents sonique, inactive; La plus basse activité métabolique résiduelle Discussion CO = Contrôle des biofilms interdentaires sur d1, d2 et d3 a été réalisée en utilisant le hydropulseur. Une réduction significative de l'activité a également été montré après les traitements sur d1 avec la brosse à dents sonique active. les données CFU des échantillons après le traitement sur le miroir de d3 les mêmes graduations entre les groupes. Cependant, l'analyse des modes de traitement intervalliques (d1-d3) a mis en évidence, indépendante des différentes procédures de traitement, le taux élevé re-croissance sur chaque échantillon après 24 h. En ne considérant que l'activité métabolique des différents groupes après 24 h (ligne de base D2 ou D3, tableau 1), il semble y avoir aucune différence du tout. la réduction de biofilm de plus de 63-83% en utilisant les résultats d'un hydropulseur en même activité de biofilm que dans le groupe témoin (CO) sans traitement, après 24 h. Cependant, cette étude principalement étudié l'activité métabolique des biofilms. Les différences dans la pathogénicité des biofilms traitées ou non traitées ne sont pas analysés. En outre, les résultats du traitement intervallique n'ont été présentés sur une période de trois jours. Biofilm repousse et la résistance au traitement peuvent changer après des périodes plus longues de nettoyage.
Le temps de l'hydropulseur a été fixé à 10 s d'application. Cependant, l'activité résiduelle dans une plage de 17 à 37% a été mesurée. En ce qui concerne les images SEM à l'hydropulseur, les régions de la matrice tondus arrêt et des zones de biofilm résiduelles dans les régions de disques extérieurs sont représentés. Ceci peut être expliqué par le jet d'eau central de l'hydropulseur, qui semble être bien définie et qui ne frappe pas la totalité de la surface des disques de biofilm revêtus de la même façon. régions marginales du disque, qui ne sont pas en contact direct avec le jet d'eau peut entraîner des quantités plus élevées de bactéries résiduelles dues à moins de force de cisaillement. En outre, l'utilisation des biofilms par lots conduit à l'adhésion bactérienne sur les surfaces du disque. Les côtés des disques ont pas été atteints par des dispositifs oraux et peuvent abriter des bactéries résiduelles. L'hydropulseur est appliquée perpendiculairement à l'espace interdentaire, conduisant à un jet tangentiel à la surface du biofilm. bactéries simples sur les côtés des spécimens ont pu rester non traitée, cependant, leur influence semble plutôt négligeable en raison de leur faible quantité. activités biofilm de 59-85% sont restés après sans contact de nettoyage avec la brosse à dents sonique pendant 10 s. Des études antérieures ont rapporté sans contact biofilm retrait de plus de 50% en côte-à-côte brosses à dent [1, 2, 17-19]. La plupart de ces études ont été analysées au microscope après coloration à l'aide d'un confocal à balayage laser microscope. Certaines zones des surfaces traitées ont été numérisées et les volumes de biofilm restants ont été calculés et mis en relation avec des groupes témoins. Contrairement à la méthode utilisée dans la présente étude, les surfaces traitées seulement ont été inclus dans l'analyse. Toutefois, ces études ne parviennent pas à comparer séparément chaque échantillon avant et après chaque traitement. L'analyse microscopique fournit seulement un aperçu des échantillons après le traitement, en raison de procédures de coloration irréversibles. L'utilisation de alamarBlue permet des mesures reproductibles. Chaque échantillon peut être analysé à différents points temporels et les effets des traitements intervalliques peuvent être observées en utilisant les échantillons identiques. Son application pour biofilm quantification a été étudiée dans plusieurs études avant [20, 21]. Il a également été validé pour le biofilm trois espèces utilisées dans les expériences (voir fichier supplémentaire 1).
Depuis la plupart des enquêtes sur le soi-disant «sans contact biofilm retrait" ont été effectuées par des dispositifs oraux directement positionnés vers le centre de la biofilm enduit les surfaces du disque au lieu d'utiliser les appareils interdentaires, et en raison de la grande variété de temps d'application, la distance spécimen surfaces et des modèles de biofilm utilisé, les comparaisons entre les études isolées doivent être effectuées que très attentivement.
les différences entre les modèles de biofilm peut également observer en se référant à la surface du matériau utilisé comme substrat. sections de l'émail humains sont souvent substitués par du titane [4], le verre [1, 3, 6, 17] ou des disques d'hydroxyapatite [2, 14, 18]. La présente étude a été réalisée avec des disques d'hydroxyapatite que l'émail des dents analogique pour éviter d'éventuels motifs d'adhésion bactérienne inhomogène le long des fissures de l'émail et des fissures.
En ce qui concerne la meilleure performance de l'hydropulseur par rapport à la Brosse à dents sonique un actif doit supporter dans l'esprit que, dans les deux cas, pas de dentifrice était impliqué, mais en utilisant une brosse à dents, cela est rarement le cas. L'utilisation supplémentaire de la pâte dentifrice avec la brosse à dents sonique activée peut avoir conduit à une élimination supplémentaire d'un biofilm due à un effet mécanique des particules de la pâte dentifrice, et aussi en raison d'autres ingrédients, par exemple tensides. Par conséquent, pour poursuivre des études devrait être étudiée l'influence supplémentaire de la pâte dentifrice, aussi bien. Cependant, il a l'intention de cette étude pour étudier l'influence spécifique des dispositifs sans interférence par d'autres facteurs. Pour de plus amples recherches, l'effet des procédures plus longues de nettoyage intervallique contribuerait à la compréhension de l'effet à long terme de modèle différent d'hygiène bucco-dentaire sur les biofilms interdentaires. La comparaison des non-contact avec le brossage par des dispositifs interdentaires et par des non-contact avec le brossage par des dispositifs oraux directement positionnés vers les biofilms faciliterait les comparaisons entre les modèles d'étude différents. De Conclusions
Basé sur les résultats, le nettoyage des régions interdentaires par hydrodynamique écoulement d'un hydropulseur peut obtenir une élimination plus efficace des interproximal biofilm par rapport aux brosses à dents soniques
abréviations
UFC:.
unités formant colonie
CO:
contrôle des spécimens (échantillons de biofilm enduit sans traitement)
d1:
Premier jour du traitement
d2:
Deuxième jour du traitement
d3:
Troisième jour du traitement
Mfum: milieu fluide
universel
modifié
NaCl: chlorure de sodium
ORS:
systèmes d'irrigation orale
RFU:
unités de fluorescence relative
SEM: microscope électronique à balayage
WF:
Waterpik® Sensonic WP-100E: hydropulseur
WPa:
Waterpik® Sensonic SR-3000E: brosse à dents sonique, actif
WPi:
Waterpik® Sensonic SR-3000E: brosse à dents sonique, inactive
Déclarations de reconnaissance
les auteurs tiennent à remercier Beatrice Sener de la clinique de dentisterie préventive, parodontologie et cariologie pour son grand soutien à la SEM images de Open Access Cet article est distribué sous les termes de la licence Creative Commons attribution. (http: //. creativecommons org /licences /par /4. 0), ce qui permet une utilisation sans restriction, la distribution , et la reproduction sur tout support, à condition que le travail original est correctement crédité. Dédicace renonciation Creative Commons Public Domain (http: //creativecommons org /publicdomain /zero /1. 0 /.) Applique aux données mises à disposition dans cet article, à moins d'indication contraire
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Les auteurs déclarent qu'ils ont aucun conflit d'intérêts. Les contributions de
Auteurs
Dr. Tawakoli conçu cette recherche et a été l'investigateur principal de cette étude. Mme Sauer et M. Becker ont aidé à la réalisation de l'étude et des questions méthodologiques. Dr Buchalla et le Dr Attin a supervisé l'étude et révisé critique du manuscrit. Tous les auteurs ont lu et approuvé le manuscrit final.
