les produits d'étanchéité de surface de Résumé
fond ont été utilisés avec succès dans la prévention de l'usure des dents érosive. Cependant, lorsque plusieurs surfaces dentaires doivent être scellés, le procédé de photopolymérisation est très chronophage. Par conséquent, le but de cette étude était de déterminer si la réduction du temps durcissant à la lumière (tout en maintenant la densité d'énergie similaire) a une influence sur base de résine d'étanchéité de surface cytotoxicité
Méthodes
disques de dentine bovine ont été traités comme suit:. Groupe 1: non traitée, les groupes 2-5: Seal & amp; Protéger et les groupes 6-9: scellant expérimental. Les groupes 2 et 6 ont été photopolymérisés (VALO LED dispositif photopolymérisation) pendant 40 s (1 000 mW /cm
2), les groupes 3 et 7 pour 10 s (1 000 mW /cm 2), groupes 4 et 8 pour 7 s (1400 mW /cm 2) et des groupes 5 et 9 pour 3 s (3200 mW /cm 2). Par la suite, les matériaux ont été extraites en milieu de culture pendant 24 h, puis relâchés lactate déshydrogénase (LDH) en tant que mesure de la cytotoxicité a été déterminée par Photometrie après que les cellules (cellules de la pulpe dentaire et les fibroblastes gingivaux) ont été exposées aux extraits pendant 24 h. Résultats Trois expériences indépendantes, tant pour la préparation des échantillons et les tests de cytotoxicité, ont été réalisées.
Dans l'ensemble, la plus faible cytotoxicité a été observée pour le groupe témoin non scellée. Pas d'influence significative des paramètres de photopolymérisation sur la cytotoxicité a été observée (p = 0,537 et 0,838 pour les cellules de pulpe et fibroblastes gingivaux, respectivement). Aucune différence significative dans la cytotoxicité des deux agents d'étanchéité a été observée après photopolymérisation avec les mêmes paramètres de photopolymérisation (groupe 2 vs 6, 7 contre 3, 4 et 5 par rapport à 8 par rapport à 9: p & gt; 0,05, respectivement, Conclusions de).
Raccourcir le temps durcissant à la lumière, tout en maintenant la densité d'énergie constante, ont donné lieu à aucune cytotoxicité plus élevée des produits d'étanchéité étudiés
. Mots-clés de temps d'étanchéité dentine de surface d'exposition lumière Résine cytotoxicité Florian J Wegehaupt , Tobias T Tauböck, Thomas Attin et Georgios N Belibasakis ont contribué également à ce travail
matériel supplémentaire électronique
La version en ligne de cet article. (doi:. 10 1186 /1472-6831-14-48) contient matériel supplémentaire, qui est disponible pour les utilisateurs autorisés.
Contexte
perte de tissu dentaire érosive dur ou de ramollissement peut être prévenue par l'application topique de divers composés chimiques (par exemple, fluorure d'amines [1] et le fluorure de sodium [2]). Ce ramollissement ou la perte de tissus durs dentaires peuvent également être évités en empêchant le contact de l'érosion provoque acides avec des tissus durs dentaires au moyen d'une barrière mécanique. Brunton et al. [3] a suggéré un revêtement de dentine exposée érosive avec un dentinaire adhésif à base de résine pour empêcher davantage l'usure. Des études récentes ont montré un bon effet protecteur d'un tel revêtement contre érosive et érosive /usure par abrasion sous la fois in vivo et
in vitro
conditions [4-7].
Cependant, le produit d'étanchéité (Seal & amp ; Protéger, DENTSPLY DeTrey, Konstanz, Allemagne) utilisé dans ces études doit être photopolymérisée pendant au moins deux fois pendant 10 s par surface de la dent, lorsque vous utilisez les réglages de l'appareil de polymérisation commun (environ 1000 mW cm intensité /2 de sortie ). Lorsque plusieurs surfaces dentaires doivent être refermés, le procédé de photopolymérisation devient très chronophage. Dans une étude récente, les produits d'étanchéité de surface ont été photopolymérisé avec une durée plus courte, tandis que l'intensité lumineuse a été augmentée en même temps [8]. Dans cette étude, aucune différence significative dans l'effet protecteur contre la déminéralisation érosive et la stabilité mécanique a été observée, lorsque les produits d'étanchéité de surface étaient rapides photopolymérisé.
Pour d'autres matériaux dentaires à base de résine (adhésifs, les composites et les ciments de scellement) une durée plus courte photopolymérisation se traduit généralement par un faible degré de conversion [9-11], des propriétés mécaniques inférieures [12] et une cytotoxicité plus élevée [13, 14]. Avec le développement de photopolymérisation unités d'intensité accrue, on pourrait envisager la compensation des degrés inférieurs de conversion en raison de courtes durées de photopolymérisation en augmentant l'intensité lumineuse de durcissement. Cependant, il y a des études [15, 16] montrant qu'une augmentation massive de l'intensité lumineuse de durcissement peut avoir un effet négatif sur le taux de conversion, avec une intensité lumineuse plus élevée résultant en un faible degré de conversion. A côté des propriétés mécaniques les plus pauvres [12, 17], un faible degré de conversion (plus grande quantité de monomères restant non polymérisés) est également associée à une cytotoxicité plus élevée de matériaux à base de résine [18-20].
Pour le présent, aucune étude a été publié qui examine l'utilisation de l'intensité lumineuse accrue pour compenser les effets secondaires négatifs (augmentation de la cytotoxicité) d'une durée raccourcie photopolymérisation des mastics de surface. Si ce raccourcissement est possible sans effets négatifs (cela signifie cytotoxicité accrue), cela pourrait réduire le temps consommé dans la procédure, lorsque l'étanchéité est appliqué dans la dentition tout ou plusieurs dents.
Par conséquent, le but de la présente étude était d'étudier si le raccourcissement de la durée de photopolymérisation (tout en maintenant la densité d'énergie similaire en augmentant simultanément l'intensité lumineuse-cuisson) aurait une influence sur la cytotoxicité des deux produits d'étanchéité de surface testés.
l'hypothèse de la présente étude a été que (1) le raccourcissement la lumière de durcissement du temps tout en augmentant simultanément les résultats d'intensité de la lumière dans une cytotoxicité plus élevée des produits d'étanchéité de surface et (2) que le type de scellant a une influence sur la préparation des échantillons de méthodes de cytotoxicité.
Pour cette étude, 126 disques de dentine bovine ont été préparés à partir de bovins inférieurs racines des incisives. Les dents de bovins ont été recueillies dans l'anonymat des sous-produits de l'abattage régulier du bétail. Abattage a été réalisée pour fournir le bétail comme aliment pour la consommation humaine. Par conséquent, aucune approbation éthique était nécessaire. Des échantillons ont été extraits avec un trépan de forage (diamètre intérieur du perçage 5 mm) de la surface distale et mésiale de chaque racine. Les carottes de forage ont été broyés jusqu'à une épaisseur de 1 mm avec du papier abrasif (800, 1000, 1200, 2400, et 4000 grit; Preuve de l'eau en carbure de silicium papier, Streuers, Erkrat, Allemagne). Après le broyage, les échantillons ont été contrôlés avec un microscope stéréoscopique à un grossissement de 40X pour assurer une élimination complète du cément. Après la préparation, les disques de dentine étaient gamma stérilisée (12 kGy, 4 h, Paul Scherrer Institut, Villigen, Suisse) alors stocké dans l'eau et plus loin stocké dans l'eau du robinet jusqu'à ce qu'ils ont été utilisés dans l'étude. Les 126 disques de dentine ont été répartis au hasard en neuf groupes (1-9, n = 14).
Étanchéité procédure
Les produits d'étanchéité de surface, leur composition, leurs numéros de lot et les constructeurs sont donnés dans le tableau 1 1.Table Composition des produits d'étanchéité utilisés de surface (de l'information du fabricant)
produit
Composition
Seal & amp; Protect (DENTSPLY DeTrey, Konstanz, Allemagne) Lot: 1203000305
Di - et des résines triméthacrylate, PENTA (dipentaérythritol penta acrylate monophosphate), silice amorphe fonctionnalisée, photoinitiateurs, butylhydroxytoluène, fluorhydrates cétylamine, triclosan, l'acétone
K-0184 (DENTSPLY DeTrey, Konstanz, Allemagne) Lot: LAN-18-153-1
nistration et triméthacrylate résines; PENTA (dipentaérythritol penta acrylate monophosphate), la silice amorphe fonctionnalisée, photoinitiateurs, butylhydroxytoluène, fluorhydrate cétylamine, l'acétone
Les disques de dentine du groupe 1 ont été laissées non traitées et non traitées ont servi de contrôle. Les disques de dentine des groupes 2 - 5 ont été traités avec Seal & amp; Protect (DENTSPLY DeTrey, Konstanz, Allemagne), alors que les disques de dentine dans les groupes 6 - 9 ont été traités avec K-0184 (scellant expérimental; DENTSPLY DeTrey). Les produits d'étanchéité respectifs (une goutte par application) ont été appliqués à la surface du disque de dentine et laissé au repos pendant 20 s. Au bout de 20 s, on a éliminé le solvant restant avec une seringue à air, et le matériau d'étanchéité a été photopolymérisée. Une deuxième couche de produit d'étanchéité a été appliqué, le solvant a été évaporé avec une seringue à air et photopolymérisée à nouveau. Light-durcissement a été réalisé avec le VALO LED dispositif durcissant à la lumière (Ultradent Products, South Jordan, États-Unis). Dans les groupes 2 et 6 photopolymérisation a été effectuée en mode standard (1000 mW /cm 2) pendant 40 s (= 40 J /cm 2), dans les groupes 3 et 7 en mode standard (1000 mW /cm 2) pendant 10 s (= 10 J /cm 2), dans les groupes 4 et 8 au mode haute puissance (1 400 mW /cm 2) pour 7 s (= 9,8 J /cm < sup> 2) et dans les groupes 5 et 9 au mode de plasma d'émulation (3200 mW /cm 2) pendant 3 s (= 9,6 J /cm 2). L'unité photopolymérisation a été vérifiée pour la cohérence avant le durcissement en utilisant un radiomètre (Optilux Radiometer, SDS Kerr, Orange, CA, USA). Tenir les échantillons avec une pince et reposant la fenêtre de sortie de lumière sur la pince garantie une distance constante entre la pointe photopolymérisation et des échantillons de surface de 0,5 cm [8]. Après la polymérisation finale, la (surface molle) une couche inhibée par l'oxygène a été éliminé avec une boulette de coton. Préparation des extraits de
Les 14 échantillons par groupe ont été transférés dans un puits (22,1 mm de diamètre) d'une cellule à 12 puits plaque de culture (SPL Life Sciences Inc., Gyeonggi-do, Corée du Sud). Pendant le transfert des disques de dentine dans les puits, on a pris soin que les disques ont été placés avec le côté étanche dans le puits. Les disques de dentine ont été recouvertes de milieu de culture de 3 ml de cellules, consistant en milieu DMEM /F12 supplémenté avec 1% de pénicilline /streptomycine, 1% de L-glutamine, de 50 ng /Fungizone ml et 10% de sérum bovin foetal inactivé par la chaleur (tous de Sigma-Aldrich, Buchs, Suisse). Ils ont ensuite été mises à incuber dans l'obscurité pendant 24 h à 37 ° C et 5% de CO 2 [21]. Ainsi, des extraits des disques de dentine ont été préparées à un rapport de 91,6 mm 2 surface de l'échantillon par un milieu de culture cellulaire millilitre suivant les recommandations de l'ISO [21]. Droits de cellules de la pulpe dentaire
cultures cellulaires de dents permanentes et fibroblastes gingivaux ont été obtenus selon les procédés décrits précédemment et les règles d'éthique [22, 23]. Les fibroblastes gingivaux ont été fournies par le Dr Anders Johansson, Institut d'Odontologie, Université d'Umeå, Suède (études Comité d'éthique humaine de l'Université d'Umeå, Suède - §68 /03, dnr 03-029). La collection de cellules de la pulpe dentaire respecte les lignes directrices du Comité d'éthique du canton de Zurich, en Suisse, pour la collecte de matériel à des fins de recherche obtenus à partir de spécimens mis au rebut et irréversible anonymisées d'origine humaine. Pour l'expérimentation de la présente étude, les cellules ont été cultivées dans du milieu DMEM /F12 supplémenté avec 1% de pénicilline /streptomycine, 1% de L-glutamine, de 50 ng /Fungizone ml et 10% de sérum bovin foetal inactivé par la chaleur (tous de Sigma ALDRICH, Buchs, Suisse). Pour les expérimentations, les cultures de cellules entre les troisième et cinquième passages ont été utilisés. cellules de la pulpe dentaire ont été ensemencées à une densité de 2 x 10 5 cellules par puits, tandis que les fibroblastes gingivaux ont été ensemencées à une densité de 1,2 x 10 5 cellules par puits (quatre cultures répliquées par groupe de dilution de l'extrait) d'un plaque à 96 puits et incubées pendant 24 heures à 37 ° C pour permettre la fixation des cellules sur le fond du puits, pour atteindre 100% de confluence. Ensuite, 200 ul par puits, des extraits ont été ajoutés aux cultures cellulaires, et on les laisse incuber pendant 24 h, afin d'étudier la cytotoxicité.
Test de cytotoxicité
Les effets cytotoxiques potentiels des différents groupes de traitement sur les cellules de la pulpe dentaire et des cultures de fibroblastes gingivaux ont été évaluées par la mesure de la LDH cytosolique libérée au niveau extracellulaire (LDH), en utilisant la CytoTox96 ® non radioactif Essai de cytotoxicité (Promega Dübendorf, Suisse). Après l'exposition de 24 h des cultures cellulaires aux extraits matériels, les surnageants de culture cellulaire ont été recueillis, tandis que les cellules adhérentes ont été lysées par trois cycles répétés de congélation-décongélation dans 200 ul de milieu de culture cellulaire. Les deux surnageants cellulaires et des lysats ont été centrifugés à 1000 rpm pendant 5 min pour éliminer les débris cellulaires, et ensuite dilués 1:10 et transférés dans une plaque à 96 puits optiquement transparent, suivi par l'addition de la solution de réaction et on a incubé pendant 30 min dans le foncé. La réaction a ensuite été arrêtée et l'absorbance a été mesurée à 490 nm dans un lecteur de microplaques Epoch (Biotek, Lucerne, Suisse), en soustrayant les valeurs de fond correspondantes de tous les échantillons. Les résultats de cytotoxicité sont exprimés en pourcentage de l'activité de la LDH libérée au niveau extracellulaire, calculées par rapport au total (+ intracellulaire extracellulaire) l'activité de la LDH. Ce pourcentage correspond à la quantité relative de cellules mortes entre les cellules totales en culture. Trois expériences indépendantes ont été réalisées (comprenant à la fois la préparation des échantillons et les tests de cytotoxicité). L'analyse statistique
Pour chacune des trois expériences indépendantes, le pourcentage moyen de LDH libérée des quatre échantillons biologiques par groupe a été calculé et utilisé ultérieurement comme valeurs pour le groupe respectif dans l'expérience respective. Pour l'analyse statistique, le pourcentage moyen des valeurs respectives (moyenne des quatre répétitions biologiques par expérience) des trois expériences a été calculée.
L'analyse statistique a été effectuée à l'aide du logiciel IBM ® SPSS ® Statistiques Version 22 (Internetional Business Machines Corp., Armonk, New York, États-Unis).
L'hypothèse d'une distribution normale des erreurs a été vérifiée, en utilisant le test de Shapiro-Wilk. L'analyse statistique a été réalisée par
2-way ANOVA avec les facteurs de réglage photopolymérisation et scellant séparément pour les cellules de la pulpe dentaire et les fibroblastes gingivaux suivie par un test post-hoc de Bonferroni /Dunn. Niveau de signification a été fixé à p & lt; Résultats de 0,05.
extracellulairement libérés activité LDH à partir de cellules de la pulpe dentaire
Le pourcentage de LDH extracellulaire libéré par les cellules de la pâte pour les différents groupes traités avec différents produits d'étanchéité et les différents paramètres de photopolymérisation sont présentés dans la figure 1. Figure 1 libération de LDH à partir de cellules de la pulpe dentaire. légende détaillée: Pourcentage (moyenne ± écart-type) de l'activité de la LDH extracellulaire libéré par les cellules dentaires de pâte à papier pour différents produits d'étanchéité (S & amp; P = Seal & amp; Protéger et scellant expérimental K-0184) et différents paramètres photopolymérisables (durée photopolymérisation en s /intensité en mW /cm2 photopolymérisation). Les comparaisons dans le même matériau d'étanchéité entre les différents paramètres de photopolymérisation qui ne sont pas significativement différentes, sont marquées avec les mêmes lettres (lettres minuscules et majuscules pour S & amp; P et K-0184, respectivement). Les comparaisons dans le même réglage entre les différents produits d'étanchéité qui ne sont pas significativement différentes, sont marqués avec ns photopolymérisation.
Aucune influence significative de la photopolymérisation de réglage (p = 0,537) sur la cytotoxicité des produits d'étanchéité de surface a été observée. Le type de produit d'étanchéité, cependant, a eu une influence significative sur la cytotoxicité a pu être observée (p = 0,018).
La cytotoxicité significativement plus faible a été observé pour le groupe témoin non traité 1. The 2-way ANOVA a montré une importante influence du type de matériau d'étanchéité sur la cytotoxicité. Dans les paramètres de lumière de durcissement respectifs, K-0184 a montré une cytotoxicité plus élevée que Seal & amp; protéger, mais ces différences ne sont pas statistiquement significatives (groupe 2 contre 6: p = 1.000; 3 contre 7: p = 1.000; 4 vs. 8: p = 1,000 et 5 par rapport 9: p = 1,000)
activité de la LDH libérée au niveau extracellulaire de fibroblastes gingivaux
Le pourcentage de LDH libérée au niveau extracellulaire de fibroblastes gingivaux pour les différents groupes traités avec différents matériaux d'étanchéité et d'éclairage différentes. paramètres de durcissement sont présentés dans la figure 2. Figure 2 la libération de LDH fibroblaste gingival. légende détaillée: Pourcentage (moyenne ± écart-type) de l'activité de la LDH extracellulaire libéré de fibroblaste gingival pour différents produits d'étanchéité (S & amp; P = Seal & amp; Protéger et scellant expérimental K-0184) et différents paramètres photopolymérisables (durée photopolymérisable en s /lumière -curing intensité en mW /cm2). Les comparaisons dans le même matériau d'étanchéité entre les différents paramètres de photopolymérisation qui ne sont pas significativement différentes, sont marquées avec les mêmes lettres (lettres minuscules et majuscules pour S & amp; P et K-0184, respectivement). Les comparaisons dans le même réglage entre les différents produits d'étanchéité qui ne sont pas significativement différentes, sont marqués avec ns photopolymérisation.
Aucune influence significative de la photopolymérisation de réglage (p = 0,838) sur la cytotoxicité des produits d'étanchéité de surface a été observée. Lorsque l'on compare les types de mastic, une influence significative sur la cytotoxicité a été observée (p & lt; 0,001).
La cytotoxicité significativement plus faible a été observé pour le groupe témoin non traité 1.
Bien que 2-way ANOVA a montré une influence significative du type de produit d'étanchéité sur la cytotoxicité, aucune différence significative n'a pu être observée entre les deux mastics photopolymérisable avec réglage de la même photopolymérisation (groupe 2 contre 6: p = 0,995; 3 contre 7: p = 1.000; 4 contre 8: p = 0,507 et 5 contre 9: p = 1.000). Cependant, K-0184 a montré une plus forte tendance vers cytotoxicité que ne Seal & amp;. Protéger dans le même réglage de lumière de durcissement de Discussion de
Dans la présente étude, les extraits des mastics respectifs ont été préparés par immersion des disques de dentine recouverts de les différents produits d'étanchéité dans un milieu de culture cellulaire. D'autres études portant sur la cytotoxicité des matériaux dentaires par exemple des adhésifs préparés soit par des extraits de durcissement des matériaux à tester dans des flacons [24, 25], des puits [26], sur des lames en verre [27] ou dans des moules [28]. Plus tard, le milieu de culture cellulaire a été exposée à ces matériaux durcis ou non durcis sont des matériaux donnés directement aux cellules [29] ou sont dissous dans un milieu de culture cellulaire [30]. L'inconvénient de durcir les matériaux dans des flacons ou des puits (par exemple puits de microplaques de 96 puits) est que la couche d'inhibition de l'oxygène, riche de monomères non durcis et composants adhésifs, au-dessus de ces matériaux ne peut pas être facilement retiré. Étant donné que les monomères non polymérisés et d'autres composants peuvent être facilement diluées à partir de la couche d'inhibition d'oxygène, il en résulte une plus grande quantité de ces substances dans les extraits préparés à partir d'échantillons dans lequel la couche d'inhibition d'oxygène n'a pas été enlevé. Il y a aussi des inconvénients dans le durcissement des matériaux sur des lames de verre ou dans des moules. Ces matériaux, ainsi que les produits d'étanchéité testés ici, sont censés réagir avec les substances dentaires durs, ils sont appliqués sur. Au cours de cette réaction, on peut supposer qu'il y a un changement dans la composition chimique ou de la réactivité des matériaux appliqués. Ce changement pourrait avoir une influence sur la libération ultérieure de possibles composés cytotoxiques à partir des matériaux. Par conséquent, nous supposons que l'application des produits d'étanchéité sur les disques de dentine et en enlevant la couche d'inhibition d'oxygène, tel que recommandé par le fabricant, avant de les immerger dans un milieu de culture cellulaire est avantageuse pour la santé des tissus. Le plus dentinaire utilisé pour la préparation du disques de dentine a été acquise à partir de dents de bovins. Bien que la réaction avec et l'effet sur la dentine humaine est la cible réelle de la recherche dentaire, il existe de nombreux avantages de l'utilisation bovine dentine. D'une part, il est facile d'obtenir un nombre suffisant de dents de bovins sonores [31] et en raison de leur plus grande surface, de multiples échantillons peut être obtenue à partir d'une dent qui entraîne une diversité de base inférieure des échantillons. D'autre part, les dents de bovins ne disposent pas d'un fluorure et /ou la carie histoire que beaucoup de dents humaines ont, ce qui pourrait influer sur leur composition chimique et l'interaction avec les produits d'étanchéité de surface appliqués.
Pour tester l'effet cytotoxique des produits d'étanchéité de surface, cellules de la pulpe dentaire et les fibroblastes gingivaux ont été utilisés. Nous supposons que dans des conditions cliniques, ces types de cellules sont celles principalement affectées par la cytotoxicité des produits d'étanchéité de surface. En outre, les cellules dentaires de pâte [21, 23, 32, 33] et les fibroblastes gingivaux [18, 22, 26, 34] ont été utilisés dans de nombreuses autres études testant la cytotoxicité des matériaux dentaires à base de résine, ou d'autres agents biologiques. Mesure de l'activité extracellulaire de LDH relarguée est un dosage de routine très approprié pour évaluer les effets cytotoxiques de différents agents, y compris des produits chimiques ou des bactéries sur les cellules eucaryotes [35, 36]. Néanmoins, il convient de noter que le test peut mesurer la mort par lyse cellulaire, plutôt que la mort cellulaire mécaniste apoptotique plus perplexe, qui serait au-delà du cadre de la présente étude.
Une limitation de la présente étude pourrait être que, pendant application des mastics aucune pression intra-pulpaire a été simulée. L'écoulement dirigé vers l'extérieur résultant de la dentine liqueur pourrait diminuer le contact des cellules de la pulpe avec les produits d'étanchéité appliqués sur la dentine. Compte tenu de ces constatations, nous supposons que les valeurs acquises pour la cytotoxicité sur les cellules de la pulpe dentaire peuvent être légèrement surestimé. Toutefois, si les produits d'étanchéité auraient été appliqués dans une configuration de test dentine barrière semblable à celle utilisée dans d'autres études testant la cytotoxicité des systèmes adhésifs [37, 38], il pourrait bien avoir été une sous-estimation de la cytotoxicité sur les fibroblastes gingivaux. Par conséquent, nous avons considéré une surestimation de la cytotoxicité sur les cellules de la pulpe dentaire pour être plus acceptable que d'une sous-estimation de l'effet cytotoxique sur les fibroblastes gingivaux.
L'hypothèse principale de la présente étude, que la réduction du temps durcissant à la lumière tout en augmentant simultanément les résultats de l'intensité lumineuse dans une cytotoxicité plus élevée des matériaux d'étanchéité de surface, doit être rejetée comme étant sans influence significative des paramètres photopolymérisables sur la cytotoxicité n'a été observée, ni pour les cellules de la pulpe dentaire, ni pour les fibroblastes gingivaux. Cette constatation est en contraste avec d'autres études montrant que pour d'autres matériaux dentaires à base de résine (composites et ciments de scellement) les résultats d'une durée plus courte photopolymérisation les plus probables dans une cytotoxicité plus élevée [13, 14]. Nous supposons qu'il ya deux explications possibles à ces conclusions contraires: D'une part, le temps durcissant à la lumière a été raccourcie, mais en même temps, l'intensité lumineuse de durcissement a été augmentée, ce qui entraîne une application de densités d'énergie similaires, tandis que dans le mentionné ci-dessus les études que le temps de durcissement de lumière a été raccourcie. On peut supposer que l'application de densités d'énergie des résultats similaires dans la formation de quantités similaires de radicaux, aboutissant à un degré similaire de conversion. D'autre part, dans les études qui ont montré une cytotoxicité plus élevée après la réduction du temps de photopolymérisation, des composites de restauration de résine [14] ou des ciments de scellement en résine [13] avec une épaisseur des échantillons de 2 mm et 1 mm ont été testés, respectivement. En revanche, l'épaisseur de la couche des matériaux d'étanchéité testés dans la présente étude, généralement entre 22 élevé à um [39] à 40 um [40]. Nous supposons que du fait de cette épaisseur beaucoup plus faible de la couche du matériau d'étanchéité, le raccourcissement de la durée de photopolymérisation a une influence plus faible sur la cytotoxicité, car la lumière de durcissement peut facilement atteindre le côté inférieur de l'échantillon (couche de scellement). Lorsque la lumière de durcissement atteint facilement, même le côté inférieur d'échantillons plus courte durée photopolymérisation fournira suffisamment d'énergie pour ces zones du matériau pour assurer un durcissement adéquat des monomères. Tous les groupes de produits d'étanchéité de surface (quels que soient les paramètres de lumière de durcissement utilisés) ont montré une cytotoxicité significative. Cependant, dans aucun des groupes photopolymérisables "rapides" (4, 5, 8 et 9) était une cytotoxicité significativement plus élevé observé que pour les groupes photopolymérisable suivant les instructions du fabricant (groupes 3 et 7) ou les groupes avec extensives photopolymérisation (groupes 2 et 6). Au meilleur de notre connaissance, il n'y a pas eu de problèmes signalés avec la biocompatibilité des produits d'étanchéité testés lors photopolymérisation suivant les instructions du fabricant, de sorte que l'on peut supposer que l'organisme humain peut tolérer l'ici trouvé cytotoxicité.
Également le secondaire hypothèse que le type de scellant a une influence sur la cytotoxicité, doit être rejeté. Bien que l'analyse de variance a montré une influence significative du type de matériau d'étanchéité sur la cytotoxicité pour les cellules de la pulpe dentaire et des fibroblastes gingivaux, aucune différence significative dans la cytotoxicité des produits d'étanchéité peut être observée lorsque l'on compare les valeurs des deux agents d'étanchéité irradiés avec des protocoles de durcissement identiques. Toutefois, un plus haut, mais pas nettement différente, la cytotoxicité a pu être observée pour K-0184 pour les deux types de cellules. Cette constatation peut être attribué à la composition du matériau. Fondamentalement, K-0184 a la même formulation que Seal & amp; Protéger, mais ne contient pas de triclosan. Triclosan est incorporé comme additif antimicrobien dans de nombreux soins personnels et de produits désinfectants tels que les savons, les nettoyants ménagers, les cosmétiques, les vêtements de sport, un bain de bouche et du dentifrice [41]. Les préoccupations relatives à l'utilisation du triclosan ont été soulevées que des études ont montré que le triclosan est capable d'induire des résistances aux antibiotiques dans les bactéries diverses tiges [42], d'accumuler dans les échantillons de lait humain et chez les poissons exposés aux eaux usées municipales [43]. La meilleure façon de prévenir ces effets secondaires négatifs de triclosan est d'éviter l'incorporation dans les produits utilisés chez des sujets humains. Cependant, si le triclosan est exclu de la formule chimique donnée de Seal & amp; protéger, cela va aussi modifier la proportion des autres composants dans la formulation. On peut supposer que ce changement pourrait se traduire par un changement ou une augmentation des composants ayant pas réagi dans le produit photopolymérisé, provoquant ensuite une cytotoxicité plus élevée.
Conclusion
Dans les limites de la présente étude, on peut conclure que raccourcissement de la durée d'exposition à la lumière, tout en maintenant la densité d'énergie, a donné lieu à aucune cytotoxicité plus élevée des matériaux d'étanchéité de surface durcie de cette manière. Prenant en outre en considération le fait que raccourcir les temps d'exposition à la lumière, tout en maintenant la densité d'énergie, n'a pas d'influence négative sur le potentiel de prévention de l'érosion et de la stabilité mécanique des matériaux d'étanchéité de surface [8], il peut être conclu que le protocole photopolymérisation (lumière 3 s -curing à 3200 mW /cm 2 (= 9,6 J /cm 2)) utilisée ici fournit une approche rapide et sûr à utiliser les produits d'étanchéité de surface pour éviter l'usure dentaire érosive. Cependant, d'autres études concernant l'abrasion, le degré de conversion et de la stabilité à long terme des produits d'étanchéité de surface de sorte durcis sont nécessaires avant que des recommandations pour l'utilisation clinique peuvent être donnés Déclarations
Acquittement de.
Les auteurs tiennent à remercier Mme Elpida Plattner pour effectuer les tests de cytotoxicité. Dr. Anders Johansson est remercié pour fournir les fibroblastes gingivaux.
Auteurs fichiers originaux soumis pour les images
Voici les liens vers les auteurs originaux soumis les fichiers pour les images. de fichier d'origine pour la figure 1 12903_2014_380_MOESM2_ESM.pdf Auteurs 12903_2014_380_MOESM1_ESM.pdf Auteurs fichier d'origine pour la figure 2 Intérêts concurrents
Les auteurs déclarent qu'ils ont aucun conflit d'intérêts. Les contributions
auteurs
FJW ont participé à la conception de l'étude de l'étude, la préparation du matériau testé, le rendement des cultures cellulaires, l'analyse des données et écrit le manuscrit. TTT a contribué à la rédaction du manuscrit et a donné entrée particulièrement critique en ce qui concerne le sujet de polymérisation. TA a participé à la conception de l'étude et un examen critique de l'article. GNB a participé à la conception de l'étude, la performance des cultures cellulaires et les dosages de la LDH, l'analyse des données et un examen critique du manuscrit. Tous les auteurs ont lu et approuvé le manuscrit final.
