Résumé
Contexte
Candida albicans
s est un champignon dimorphique qui fait partie de la flore microbienne commensale de la cavité buccale. Lorsque les défenses immunitaires de l'hôte sont altérées ou lorsque la flore microbienne normale est perturbée, C. albicans
déclenche des infections récurrentes de la muqueuse buccale et de la langue. Récemment, nous avons produit NOD /SCID.e2f1
- /- souris qui montrent hyposalivation, diminution du débit des protéines salivaires, manquent IgA et IgG dans la salive, et ont diminué les cellules NK. Notre objectif était de caractériser l'infection et la formation de biofilm C. albicans chez la souris
Méthodes
NOD /SCID.e2f1
-. /- Souris ont été utilisées comme un modèle animal pour l'infection de C. albicans. Résultats de formes de levure et hyphes solutions de C. albicans ont été introduits dans la cavité buccale après la désinfection par chlorhexidine.
Le nombre de C. albicans
colonisées et ont diminué d'une manière dépendante du temps dans NOD /SCID.e2f1
+ /+ après l'inoculation. Cependant, les niveaux de colonisation étaient plus élevés dans NOD /SCID.e2f1
+ /+ de NOD /SCID.e2f1
- /- souris. Chez les souris nourris 1% d'eau de saccharose avant l'inoculation, l'échantillon de C. albicans a été fortement contaminée par des micro-organismes indigènes dans la cavité buccale; et n'a pas été chez les souris nourris pas d'eau du saccharose. La colonisation de C. albicans
n'a pas été influencée par la contamination par des micro-organismes indigènes. La forme des hyphes de C. albicans
restreint la restauration des micro-organismes indigènes. La diminution de la salive dans NOD /SCID.e2f1
- /- n'a pas augmenté la colonisation de C. albicans
par rapport à NOD /SCID.e2f1
souris + /+. Nous suggérons que le récepteur dans la salive de C. albicans
ne peut pas être fourni suffisamment dans la cavité buccale du NOD /SCID.e2f1
- /-.
Souris Conclusion
La protéine de la salive écoulement peut être très important pour C. albicans de colonisation initiale, où les micro-organismes autochtones ne portent pas atteinte à la colonisation dans la cavité buccale.
Mots-clés albicans
Candida NOD /SCID.e2f1
- souris Saliva colonisation sucrose électronique matériel supplémentaire
La version en ligne de cet article (doi:. 10 1186 /1472-6831-12-36). contient du matériel supplémentaire, qui est disponible pour les utilisateurs autorisés
Contexte spp
Candida.
sont commensaux humains couramment colonisant les surfaces muqueuses humaines et peuvent participer à la formation de biofilm sur les surfaces muqueuses et cutanées, ainsi que sur les surfaces de l'appareil, par exemple, des prothèses, cathéters veineux, et des cathéters urinaires [1 -7]. Toutefois, dans certaines conditions, le champignon provoque une variété d'infections par des infections bénignes de la muqueuse à candidose invasive de la vie en danger [8]. De nombreuses manifestations de la candidose sont associés à la formation de biofilms sur les tissus hôtes (par exemple, par voie orale) et grive sur les dispositifs médicaux à demeure (veineux de candidémie cathéter associée centrale) [9]. Une caractéristique cliniquement significative des biofilms microbiens est leur résistance accrue aux traitements médicamenteux antimicrobiens [10-12].
Candida albicans
s est commensal sur les surfaces muqueuses humaines et est l'une des plus importantes infections nosocomiales les humains. C. albicans
est la cause la plus courante de diverses formes de candidose [13]. Dans des conditions de dysfonctionnement immunitaire, colonisant C. albicans
peut devenir un pathogène opportuniste causant des infections des muqueuses récurrentes de la cavité buccale et du vagin chez les hôtes immunodéprimés tels que les patients âgés et séropositifs [14, 15]. C. albicans est un champignon
pleïomorphe ayant la capacité de faire la transition entre la levure et les formes filamenteuses cellulaires essentiels pour la virulence; donc les formes filamenteuses constituent un élément central dans la pathogenèse de C. albicans. Divers modèles ont été mis en place pour étudier la candidose, y compris les interactions cellulaires -epithelial Candida utilisant des lignées de cellules immortalisées humaines épithéliales en culture de tissus [16-18] où C. albicans
adhère aux cellules épithéliales de la muqueuse buccale et aussi envahit ces cellules. Invasion dans la limite des cellules épithéliales de la muqueuse buccale est caractéristique des deux modèles animaux humains et expérimentaux de candidose oropharygeal [19-22].
Une récente enquête NOD développé /fond SCID-1 E2F souris déficientes (NOD /SCID.e2f1
- /-) (cellules T et B ne développent pas où l'E2F-1 perte de fonction dans les /souris de fond SCID NOD ne dispose pas d'une réponse auto-réactive) [23]. Le NOD /SCID.e2f1
- /- souris ont diminué le volume de salive, le manque sIgA et IgG dans la salive, par rapport à NOD.e2f1
souris + /+. Cette souris a diminué les cellules NK par comparaison avec des souris SCID et peut être un modèle animal utile pour étudier l'infection par voie orale, la colonisation et la formation de biofilm. En outre, les greffes de tissus humains peuvent être utilisés dans cette souris. Ces souris ont une longue survie parce qu'ils ne développent pas de maladies systémiques telles que diabète sucré insulinodépendant et le syndrome de Sjögren par rapport à la souche mère NOD.e2f1
- souris - /. Récemment, nous avons trouvé que ces souris sont très sensibles à la carie dentaire pathogène; la colonisation de Streptococcus mutans quand NOD /SCID.e2f1
- /- souris sont pré-traitées avec de la salive humaine ou sIgA en utilisant une faible concentration (1%) supplément de saccharose; S. mutans de la formation de biofilm est survenu lorsque les souris ont été fournis 1% d'eau du saccharose et un régime non-saccharose [24]. Par conséquent, ces souris peuvent être un modèle animal utile pour les infections de C. albicans dans la cavité buccale, car ils ont diminué le volume de salive et sont déficients en activité immunitaire par T, les cellules B et les cellules NK.
Modèles d'infection de mammifères, dans les modèles de souris particulier, sont couramment utilisés pour étudier l'interaction hôte-pathogène des agents pathogènes humains. Les modèles murins pour les infections de C. albicans à la fois superficielles et systémiques ont été développés et sont largement utilisés pour étudier la pathogenèse et de déterminer la virulence des mutants de C. albicans définis [25, 26]. Saliva comprend divers agents anti-microbiens et est susceptible de jouer un rôle important dans la résistance à l'infection par C. albicans
dans la cavité buccale. souris immunodéficientes telles que Rag1 - /- et les souris CB-17.SCID ont été utilisés comme un modèle d'infection de C. albicans
[27]. Cependant, on sait très peu sur la contribution de la salive dans l'initiation de la colonisation et de la muqueuse de l'infection de C. albicans dans la cavité buccale en utilisant le modèle de la souris. Dans cette étude, nous avons étudié la colonisation initiale de C. albicans
dans le modèle animal utilisant NOD /SCID.e2f1
+ /+ et NOD /SCID.e2f1
- /- souris.
Méthodes
souches et conditions de culture
La souche utilisée était C. albicans
SC5314. C. albicans
a été incubé pendant 24 h à 37 ° C dans la levure peptone dextrose (YPD; 2% de Bacto peptone, 2% de dextrose et 1% d'extrait de levure, Becton Deckinson, Sparks, MD) bouillon avant le début de chaque expérience . La forme de levure de C. albicans
était prédominante dans la culture avec YPD pendant la nuit; alors que la forme de mycélium a eu lieu dans RPMI1640 (Gibco-Invitrogen, Grand Island, NY) avec 5% de FBS dans la culture pendant la nuit (figure 1A). Les deux types cellulaires ont été utilisés pour inoculer la cavité buccale. Figure 1 Observation de C. albicans levure et hyphes formes, et le nombre de colonies après l'inoculation. C.albicans
formes de levure et hyphes ont été prises les images en microscopie après incubation d'entre eux dans YPD et RPMI1640 avec 5% de SBF (A). La colonisation a été observée sur les plaques d'agar agar YPD et BHI versé écouvillons de la cavité buccale du NOD /SCID.e2f1
- /- souris nourries 1% d'eau de saccharose à 60 min après l'inoculation (B). Blanc et flèche noire indiqué C. albicans
et colonies de micro-organismes autochtones respectivement. Ces colonies ont été prises des photos au microscope stéréoscopique. Les données sont représentatives de trois essais indépendants. Les échantillons ont été tamponnées des cavités orales de quatre 4-month-old female NOD /SCID.e2f1
+ /+ et NOD /SCID.e2f1
- /- souris à 30, 60, et 90 minutes après l'inoculation à l'aide la forme de levure. Des échantillons frottée dans des souris eau amenée (C), soit 1% d'eau saccharose (D) pendant une nuit avant l'inoculation a été versé sur de la gélose YPD. Les échantillons frottée dans des souris eau alimentée (E) ou 1% d'eau (F) avant l'inoculation ont été versés sur gélose BHI. UFC données ont été obtenues à partir de trois expériences indépendantes avec quatre souris de chaque souche. Les valeurs sont exprimées comme les moyennes ± les écarts-types (SDS) des données. Les astérisques indiquent des différences significatives (P *
& lt; 0,05) en C et D et des différences significatives (** & lt; 0,05). Entre l'eau (E) et 1% d'eau de saccharose (F) pour boire
animaux
souris hétérozygotes ΔE2F-1 NOD /SCID ont été élevés pour générer des homozygotes ΔE2F1 NOD /SCID. Trois souches de souris NOD /SCID (E2F1
+ /+, +/- et - /-) ont été identifiés par PCR [23]. Toutes les souris utilisées étaient des femmes, 4 mois, et ont été maintenus en conformité avec les lignes directrices pour le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire de l'Institut national des maladies infectieuses. Les protocoles expérimentaux (# 211125) ont été approuvés par l'Institut national de la commission des ressources animales des maladies infectieuses.
échantillonnage bactérienne et l'unité de formation de colonies (CFU) estime
bactériennes inoculation, l'échantillonnage et les estimations CFU ont été effectuées en utilisant des procédures et conditions décrit précédemment [28-30]. les levures et les formes hyphes de C. albicans ont été cultivées dans du RPMI1640 YPD et avec 5% de bouillon de FBS pendant une nuit et lavées deux fois avec une solution saline stérile tamponnée au phosphate (PBS). Dans notre étude précédente, nous avons démontré S. mutans de colonies de comptages ont été significativement plus élevé que celui des autres streptocoques (ie S. sanguis, S. sobrinus,
et S. salivarius
) chez les souris qui ingérée 1% de saccharose dans de l'eau un jour avant l'inoculation [28]. De la même manière, NOD /SCID.e2f1
+ /+ et NOD /SCID.e2f1
- /- souris ont également reçu de l'eau potable contenant 1% de saccharose (inférieure à la concentration habituelle dans le jus) un jour avant de C. albicans
inoculation pour encourager l'adhésion précoce de C. albicans
dans des conditions ressemblant à un environnement oral naturel. En revanche, l'eau potable (pas de saccharose) a été utilisé comme témoin. Chlorhexidine (CHX; 0,2%) imbibé de cotons-tiges stériles ont été utilisés pour désinfecter les cavités buccales des souris dont les dents, la langue et les surfaces muqueuses. La cavité a été immédiatement lavé avec du PBS stérile. Cette désinfection a été confirmé que quelques cellules bactériennes ont été observées chez les souris à 30, 60 et 90 minutes après l'inoculation. formes de levure et hyphes solutions de C. albicans ont été introduits dans les cavités orales de trois femelles à 4 mois d'âge à une concentration finale de 5 x 10 9CFU dans 250 pi de PBS pendant une période de 1 min. Après l'inoculation, des échantillons ont été prélevés sur la langue et la muqueuse buccale avec une boule de coton stérile à 30, 60 et 90 minutes après l'inoculation, puis trempés dans 2 ml de PBS. Les échantillons dans du PBS stérile ont été traitées par ultrasons en utilisant une dispersion à ultrasons (puissance 60 W) pendant 10 secondes, puis versé sur de la gélose YPD pour déterminer C.albicans
nombre de colonies sur gélose BHI et pour C. albicans et indigènes
numéro microorganisme colonie (figure 1B). CFU a été déterminée par comptage des colonies sur l'agar YPD au bout de 24 heures et sur des plaques de gélose BHI après 48 h d'incubation aérobie à 37 ° C. Analyse statistique
Toutes les données ont été analysées en utilisant le logiciel statistique SPSS pour Windows ( la version 100, Chicago, IL). test t de Student a été utilisé pour comparer les données de commande et les données de C. albicans
après incubation. Effets de résultats de * indiquent P
-values inférieur à 0,05, et ** à 0,01 ont été considérés comme importants. De la diminution de la salive et des micro-organismes oraux autochtones sur la colonisation initiale des C. albicans
Saliva est pensé pour jouer un rôle important dans la fixation et la colonisation de C. albicans
sur la dent et la muqueuse buccale. Nous avons évalué les effets de différents volumes de salive sur la colonisation de C. albicans en utilisant NOD /SCID type et sauvage NOD /SCID.e2f1
- /- souris. Les numéros CFU de C. albicans
forme de levure colonisé dans la cavité buccale après la désinfection par chlorhexidine. la colonisation de C. albicans chez la souris ont été significativement diminué, passant de 30 minutes à 90 minutes après l'inoculation à des souris NOD /SCID.e2f1
+ /+ souris lorsqu'elles sont traitées avec ou sans eau de saccharose (figure 1C et RÉ). La colonisation a également diminué; mais ces réductions ne sont pas significativement différente dans NOD /SCID.e2f1
- /- souris par rapport à NOD /SCID.e2f1
souris + /+. C. albicans de numéros CFU étaient significativement plus faibles dans le NOD /SCID.e2f1
- /- souris que celles de NOD /SCID souris de type sauvage alimenté l'eau après 60 et 90 min après l'inoculation (figure 1C). Par conséquent, la salive diminution est associée à la colonisation réduite de C. albicans
. Cependant, les différences significatives entre NOD /SCID sauvage et NOD /SCID.e2f1
- /- souris disparu en incluant le saccharose dans l'eau potable (figure 1D). YPD a été utilisé comme milieu sélectif pour C. albicans
parce qu'il y avait une possibilité que certains micro-organismes autochtones dans les souris peuvent contaminer l'échantillon tamponné après désinfection par chlorhexidine.
BHI agar placage a également été utilisé pour confirmer les niveaux de contamination par des autochtones micro-organismes. Le nombre total de C. albicans
et indigènes des micro-organismes sur le BHI agar étaient semblables à ceux sur les plaques YPD dans le NOD /SCID.e2f1
+ /+ souris avec de l'eau potable sans saccharose et en fonction du temps la baisse était également similaire dans le nombre de colonies dans YPD à ceux de BHI (figure 1C et figure 1E). Cependant, le nombre total de C. albicans
et des micro-organismes autochtones a augmenté de manière significative dans le sucrose-eau par rapport à no-sucrose eau dans NODSCID.e2f1
+ /+ souris (Figure 1E et F). Cependant, il n'y avait pas de différences significatives entre les échantillons à chaque fois d'échantillonnage dans la consommation d'eau du saccharose. Dans le cas de NOD /SCID.e2f1
- /- souris, quelques bactéries indigènes ont augmenté de manière significative en ajoutant du saccharose dans l'eau potable, et la colonisation n'a pas montré de différences significatives entre les temps d'échantillonnage (Figure 1E et F). En revanche, avec du saccharose dans l'eau potable, de nombreux micro-organismes indigènes ont été trouvés parce que les nombres CFU sur BHI étaient significativement plus élevés que ceux sur YPD en utilisant le même échantillon (figure 1F). Par conséquent, le saccharose aide à la restauration en fonction du temps des micro-organismes indigènes après la désinfection par la chlorhexidine, mais ne modifie pas l'infection par C. albicans a augmenté
. En outre, la diminution de la salive ne peut pas aider la colonisation de C. albicans
ou la restauration des bactéries indigènes dans NOD /SCID.e2f1
- /-. Système de souris
Comparaison de la colonisation entre la levure et les formes hyphes chez la souris cavité buccale
dans une infection grave par C. albicans
, la forme des hyphes a un rôle très important par rapport à la forme de levure. Par conséquent, nous avons testé la colonisation orale de la forme des hyphes par rapport à la forme de levure à 60 min après l'inoculation. Les colonisations de C. albicans
étaient semblables dans les hyphes et de levures dans les deux formes souris (figure 2A et B). La colonisation des micro-organismes totaux était significativement plus élevée avec de l'eau potable du saccharose que sans saccharose l'eau sous forme de levure, mais il n'y avait pas de différence dans la forme des hyphes dans NOD /SCID.e2f1
souris + /+ (Figure 2C et D). Le volume de salive diminué dans NOD /SCID.e2f1
- /- souris et forme des hyphes dans les deux souris n'a pas induit les effets de l'eau potable du saccharose sur le rapport de la forme de levure dans NOD /SCID.e2f1
+ /+ souris. Par conséquent, la forme de C. albicans volume de salive et hyphes
peut restreindre la restauration des micro-organismes indigènes. Figure 2: Comparaison de la forme de levure et de la forme des hyphes dans le nombre de colonies de C. albicans. Les échantillons frottée des cavités orales à 60 minutes après l'inoculation de la forme de levure ou de la forme des hyphes en quatre 4-month-old female NOD /SCID.e2f1
+ /+ et NOD /SCID.e2f1
- /- souris eau amenée (A) soit 1% de l'eau du saccharose (B) pendant une nuit a été versé sur de la gélose YPD. D'autres échantillons de souris eau alimentée (C) ou 1% d'eau de saccharose (D) ont été versés sur gélose BHI. UFC données ont été obtenues à partir de trois expériences indépendantes avec quatre souris de chaque souche, et les valeurs sont exprimées en tant que moyennes ± écarts-types (SDS) des données. Les astérisques indiquent des différences significatives (P *
& lt; 0,05) en A et des différences significatives (** & lt; 0,05) entre l'eau (C) et 1% d'eau de saccharose (D) pour la discussion The potable. la colonisation de C. albicans
dépend de plusieurs facteurs: l'acquisition ou à l'entrée des cellules dans la cavité buccale, la fixation et la croissance de ces cellules, la pénétration des tissus et l'élimination des cellules de la cavité buccale. Dans cette étude, le NOD /SCID.e2f1
- /- souris avec une diminution de la salive a montré la colonisation négative de C. albicans
par rapport à des souris NOD /SCID type sauvage. Sur la surface dentaire revêtue d'une pellicule salivaire, les interactions d'adhérence microbiennes peuvent comprendre des molécules adsorbées de salive. La pellicule de salive augmente l'adhérence des cellules de C. albicans à des billes HA [31]. D'autres chercheurs ont déjà montré la présence de sérum et salivaires pellicules peuvent aider à la colonisation de C. albicans sur des bandes acycliques et matériaux de revêtement de la prothèse [32, 33]. Par conséquent, nous supposons les souris NOD /SCID produire de la salive contenant des récepteurs à se lier à C. albicans
et créer une surface de la muqueuse de l'environnement de la salive en exposant dans la cavité buccale.
En revanche, les défenses innées comprennent la barrière et anti épithéliale -candidal dans la salive des composés tels que le lysozyme [34], histatines [35], la lactoferrine [36] et la calprotectine [37, 38]. défenses de l'hôte innées sont essentiels au maintien de la santé bucco-dentaire. Saliva comprend lysozyme, lactoferrine et histatines qui sont censés être les trois protéines antimicrobiennes non immunologiques majeurs pour moduler les populations Candida dans la cavité buccale [39]. Cependant, la salive a diminué modulé négativement les populations de C. albicans dans cette étude. Dans notre étude précédente, la salive de NOD /SCID.e2f1
+ /+ et E2F1
- /- souris a été caractérisée en concentration de protéine /ml, les activités d'amylase et de la concentration de protéines par min /ml [24]. Il n'y a eu aucune différence significative dans la concentration de protéine et l'activité de l'amylase entre les souris. La concentration de protéine par minute dans 1 ml de salive était significativement plus faible chez des souris NOD /SCID.e2f1
- /- souris par rapport à des souris NOD /SCID.e2f1
souris + /+. Ici, nous ne mesurons pas les activités de lysozyme, lactoferrine, ou histatines dans la salive de NOD /SCID.e2f1
+ /+ souris et NOD /SCID.e2f1
- /- souris, mais les activités de l'immunité innée et les récepteurs à l'attachement de C. albicans ne peuvent pas être fournis suffisamment dans la cavité orale du NOD /SCID.e2f1
- /- par rapport à NOD /SCID.e2f1
+ /+ souris. protéines salivaires de souris sont mal existaient dans NOD /SCID.e2f1
- /- souris. Pris ensemble, la salive de la souris fonctionne positivement pour la colonisation initiale de C. albicans
plutôt que de protéger par l'immunité innée, une fonction opposée à S. mutans
colonisation [24].
La colonisation a diminué dans une Time- manière dépendante sans les effets de la différence de volume de salive dans NOD /SCID.e2f1
+ /+ et NOD /SCID.e2f1
- /- souris. La colonisation peut être diminuée par des effets de lavage avec un volume approprié de la salive. De plus, l'immunité à médiation cellulaire joue un rôle important dans la résistance à la candidose des muqueuses [40, 41]. La surface de la muqueuse fournit une barrière protectrice contre les infections bactériennes et fongiques dans la cavité buccale. Les ß-défensines sont de petits peptides amphipathiques cationiques qui présentent un large spectre d'activité contre les bactéries Gram-positives et Gram-négatives et les espèces fongiques [42]. NOD /SCID.e2f1
+ /+ et NOD /SCID.e2f1
- /- souris ne disposent pas des cellules T et B matures, mais ont une barrière de protection avec l'immunité à médiation cellulaire. Par conséquent, l'immunité à médiation cellulaire peut ne pas être associé à la différence de la colonisation de C. albicans entre NOD /SCID.e2f1
+ /+ et NOD /SCID.e2f1
- /- les souris. La fonction positive pour C. albicans
dans la cavité buccale indique un modèle animal utile pour la colonisation initiale de C. albicans
dans /SCID souris de type sauvage NOD par rapport à NOD /SCID.e2f1
- /-.
souris rapport précédent suggéré que la flore bactérienne indigène pourraient supprimer l'étendue de la colonisation de C. albicans
en interférant avec sa capacité à fixer à la muqueuse surface en comparaison avec les rats exempts de germes et de rat conventionnel [ ,,,0],43]. Ceci a été expliqué par compétition pour les sites récepteurs épithéliaux nécessaires pour la fixation Candida ou enzymatiquement en modifiant les surfaces des cellules de levure. Notre système de modèle de souris en utilisant l'inoculation par voie orale de C. albicans
est différent du précédent rapport en utilisant le germe rat libre et classique et indique un meilleur modèle pour explorer les effets des composants salivaires et des micro-organismes autochtones sur la colonisation sous la condition de fond naturel que le système de modèle précédent . Saccharose fonctionne comme un substrat pour la production de glucane par les streptocoques oraux. La consommation d'eau de saccharose avant l'inoculation fournit une source de glucane pour la restauration des micro-organismes indigènes. CHX était uniformément efficace contre les souches de micro-organismes supportés communs. Le traitement avec CHX désinfecté le micro-organisme indigène avant l'inoculation dans les deux sans sucrose l'eau potable et de saccharose [44, 45]. Cependant, les micro-organismes indigènes contaminés l'échantillon de C. albicans
chez les souris nourris 1% d'eau de saccharose. La colonisation de C. albicans
n'a pas été affectée par la restauration des micro-organismes autochtones. Par conséquent, la colonisation initiale de C. albicans
est pas affectée par la suite la colonisation des micro-organismes indigènes dans la cavité buccale. Il est suggéré que les cellules colonisées de C. albicans
ne sont pas éliminés par l'effet enzymatique ou physique par des microorganismes indigènes.
Cellules de levure-forme adhèrent plus efficacement que les cellules hypal aux cellules endothéliales dans des conditions d'écoulement [46] . Bien que les cellules verrouillées dans l'état filamenteux afficher également une virulence réduite [47-49], la capacité de former des hyphes est important pour C. albicans
pour causer la maladie après la diffusion: les cellules verrouillées sous la forme de levure restent avirulent jusqu'à ce qu'ils soient autorisés à forme hyphes, après quoi, les souris succombent à l'infection [50]. hyphes de C. albicans sont altérées dans leur capacité à adhérer à la cavité buccale humaine par la bactérie Streptococcus
gordonii [51]. Pour coloniser et infecter l'environnement buccal, les cellules de levure doivent tout d'abord adhérer aux cellules hôtes et des tissus ou des matériaux prothétiques dans la cavité buccale ou de co-agrégé avec la microflore buccale [52-54]. Dans cette étude, la forme d'hyphes de C. albicans
a montré des résultats similaires comme la forme de levure, mais la restauration des micro-organismes autochtones était plus faible avec la forme des hyphes que celle avec la forme de levure. Cela peut indiquer des effets de restriction par la forme des hyphes sur la restauration.
Nous fournissons ici un nouveau système de modèle animal original, qui peut être un modèle utile pour explorer la colonisation initiale orale de C. albicans.
Le flux de protéine salivaire peut jouent un rôle important dans le maintien du comportement commensale de C. albicans
et devient un agent pathogène opportuniste dans la condition d'un déficit immunitaire tel que SCID. Ces souris sont nécessaires pour ces enquêtes afin de déterminer plusieurs facteurs qui contribuent à la susceptibilité des infections à Candida
. Conclusions
En conclusion, le flux de protéines de la salive peut être très important pour C. albicans de colonisation initiale, où le micro-organismes autochtones ne portent pas atteinte à C. albicans de colonisation initiale dans la cavité buccale.
Déclarations Remerciements
les auteurs remercient Chung Xi pour le support technique, des discussions utiles et des conseils. Ce travail a été soutenu en partie par une subvention en aide pour le développement de la recherche scientifique (19791360, 22791822 et 21390506); et le ministère de la Santé, du Travail et des Affaires sociales (H22 Iryo-Ippan-026). Ce travail a également été soutenue en partie par un projet de la Fondation de recherche stratégique Grant assistée pour les universités privées du ministère de l'Education, Culture, Sports, Science et Technologie du Japon (MEXT), 2008-2012 (S0801032).
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Les auteurs déclarent qu'ils ont aucun conflit d'intérêts. Les contributions
auteurs
NK a effectué des expériences animales et participer à la rédaction du manuscrit. NN a permis l'expérimentation animale et à la rédaction du manuscrit. TI a aidé à produire la souris. YK a aidé à maintenir et à produire des souris. YK a participé à la conception de l'étude. OS a participé à la conception de l'étude et la coordination. HS conçu l'étude, réalisée la production de la souris et décrit manuscrit. Tous les auteurs ont lu et approuvé le manuscrit final.
