Résumé de l'arrière-plan
Pour étudier l'activité antifongique de la propolis, triple pâte antibiotique (TAP), le gel de chlorhexidine à 2% et de l'hydroxyde de calcium avec propylène glycol sur Candida albicans
infectés par le canal radiculaire tubules à deux profondeurs différentes (200 um et 400 um) et deux intervalles de temps (jour 1 et 7).
Méthodes
Un total de 90 dents humaines extraites ont été sectionnée en dessous de la jonction cémentaire et la partie apicale de la racine pour obtenir 6 mm du tiers moyen de la racine. Le canal a été élargi à un diamètre intérieur de 0,9 mm en utilisant la taille Pesso Reamer pas. 2 (Mani®, UT, Japon), suivie par l'irrigation du canal et autoclaves. Les spécimens ont été infectées pendant 21 jours avec C. albicans
. Ensuite, les échantillons ont été divisés en cinq groupes avant le placement de médicaments dans le canal. (Groupe 1) Propolis, groupe 2 (pâte antibiotique triple), groupe 3 (2% de chlorhexidine gel), Groupe 4 (hydroxyde de calcium avec du propylène glycol) et le groupe 5 (solution saline stérile de contrôle négatif). À la fin de 1 à 7 jours, les copeaux de dentine ont été prélevés à deux profondeurs dans les tubules (200 pm et 400 pm), et le nombre total d'unités formant des colonies ont été calculées pour l'évaluation de la population fongique viable restant indispensable. Les valeurs ont été analysées à l'aide statistiquement non-paramatric Kruskal-Wallis et Mann-Whitney-U tests pour comparer la réduction médiane de Candida albicans
entre tous les médicaments dans le canal. Les valeurs de probabilité de P & lt; 0,05 ont été fixés comme référence pour des résultats statistiquement significatifs.: Résultats
La réduction du nombre d'unités formant des colonies était statistiquement significative dans tous les groupes par rapport au groupe témoin (solution saline stérile), à l'exception de la propolis à jour 1 (400 um Propolis de profondeur).
Conclusion était moins efficace que la pâte antibiotique triple, gel de chlorhexidine à 2% et de l'hydroxyde de calcium avec le propylène glycol contre C. albicans
le jour 1 à 400 um de profondeur à l'intérieur des tubules dentinaires, mais aussi efficace après 7 jours à deux profondeurs
Mots-clés albicans
antifongique Candida
endodontie Ex-vivo Medicaments électronique matériel supplémentaire
La version en ligne de cet article (doi:.. 10 1186 /1472-6831 -14 à 53) contient du matériel supplémentaire, qui est disponible pour les utilisateurs autorisés.
Contexte
microorganismes sont les principaux agents responsables du développement de pulpaire et l'inflammation périapicale. Il a été montré que les lésions périapicales guérit à un taux plus élevé dans les dents en l'absence de contamination microbienne /infection dans le canal radiculaire [1]. L'objectif principal du traitement endodontique est d'éliminer les micro-organismes du système radiculaire infecté. l'instrumentation chimiomécanique élimine la plupart des micro-organismes; cependant, il est difficile d'éliminer complètement les micro-organismes en raison de la complexité anatomique et la limitation de l'accès au système de canaux par les instruments et irrigants [2].
Il y a eu une préoccupation croissante à propos de la parodontite apicale persistante, dans lequel les micro-organismes sont résistants à la la thérapie de routine et l'infection peut persister malgré le traitement [3]. Par conséquent, le besoin de médicaments augmente intracanalaires en particulier dans les cas où l'infection est résistant au traitement régulier et le résultat du traitement endodontique est compromise. Des années d'études microbiologiques sur la parodontite apicale persistante ont montré que Candida albicans
sont les champignons les plus fréquemment trouvés, allant de 7 à 18% des infections [4]. C. albicans
sont également rencontrés comme une flore buccale normale, d'où la présence de C. albicans
dans un canal radiculaire infecté est très favorable [5-7].
C. albicans
conserve plusieurs facteurs de virulence qui peuvent contribuer à la parodontite apicale persistante. La formation des hyphes et thigmotropisme propriété permettent C. albicans
de pénétrer profondément dans les tubules dentinaires, et aussi la modification phénotypique de C. albicans
aide à adapter dans des conditions écologiquement difficiles, comme dans un environnement alcalin élevé [8]. Ces facteurs de virulence rendent C.albicans
pour être résistant à l'hydroxyde de calcium, qui est le médicament le plus couramment utilisé intracanalaire [9]. De plus, dans le dentinaire tubules les substances tampons peuvent empêcher l'activité de l'hydroxyde de calcium en amenant le pH à être abaissée goutte [10, 11]. Hydroxyde
de calcium a limitation, l'eau de base est acide car il est autorégulateur et ne soulève pas le pH, et une variété d'agents ont été introduits en tant que médicaments inter-nomination. Ces médicaments intracanalaires doivent être capables de pénétrer profondément dans les tubules de la dentine en présence de microbes pour assurer l'élimination complète de l'infection de l'ensemble du système de canal.
Chlorhexidine (CHX) est largement utilisé en endodontie comme irrigant et médicaments dans le canal . CHX a une assez large spectre d'activité contre les organismes aérobies et anaérobies ainsi que les espèces de Candida. CHX agit en libérant la molécule chargée positivement pour permettre à la molécule CHX de pénétrer dans la cellule de micro-organisme, conduisant à la mort cellulaire [10]. La chlorhexidine a été démontrée pour être hautement efficace contre C. albicans
par rapport à l'hydroxyde de calcium, en particulier dans des formulations de gel à une concentration de 2% [12].
Hoshino et al.
Introduit l'utilisation de la pâte antibiotique triple, qui est un mélange de ciprofloxacine, le metronidazole et la minocycline. Des études ont montré que l'application topique de cette pâte désinfecte les lésions dentinaires et recalcifies la dentine ramollie [13-15]. Ces antibiotiques, en combinaison, ont été rapportés pour être en mesure de pénétrer à travers les tubules dentinaires et éradiquer anaérobie, des micro-organismes Gram-positifs et Gram-négatives [16, 17].
Propolis, un composé résineux fortement adhésif produit par Apis mellifera
L. abeilles, ont démontré une activité antimicrobienne et sont utilisés dans le traitement des infections bactériennes, fongiques et des maladies inflammatoires [18]. Le principal composant chimique présent dans la propolis sont des flavonoïdes, des composés phénoliques, et divers composés aromatiques. Les flavonoïdes sont bien connus des composés végétaux qui ont un antioxydant, anti-bactériennes, antifongiques, antiviraux et anti-inflammatoires [19, 20]. Propolis est bien connu pour ses activités antifongiques contre C. albicans
[21-26]. Toutefois, son effet contre C. albicans
dans les tubules dentinaires est à peine étudiés.
Par conséquent, le but de cette étude ex vivo était d'évaluer et de comparer l'efficacité antifongique de la propolis, la pâte antibiotique triple, gel de chlorhexidine 2% Méthodes de, et d'hydroxyde de calcium avec du propylèneglycol contre C. albicans
.
le protocole d'enquête a été approuvé par le Comité de recherche et d'éthique de l'Université médicale internationale. La méthode utilisée est une modification de celui décrit précédemment [27] sous fraîchement
. Micro-organisme cultivé (24 heures) C.albicans
ont été utilisés dans cette étude. Les C. albicans
ont été cultivées dans Sabouraud Dextrose (SD) Agar et SD Broth (BD Difco ™, Franklin Lakes, New Jersey, États-Unis).
Échantillons de blocs de dentine
Un total de 90 intacte humaine fraîchement extrait dents, y compris les incisives centrales maxillaires, les incisives latérales maxillaires, canines maxillaires et mandibulaires canines avec la formation complète de la racine ont été sélectionnés pour cette étude. Les dents ont été nettoyées avec curettes parodontales pour enlever les tissus parodontaux et de l'os et stockées dans une solution saline. Un bord revêtu de diamant de disque à faible vitesse (Bredent®, Wittighausen, Senden, Allemagne) monté sur une machine de fraisage en refroidissant avec de l'eau a été utilisée pour la section des dents en dessous de la jonction cémentaire et la partie apicale de la racine pour obtenir 6 mm du tiers médian de la racine. Racine cément a été retiré à l'aide de longues fraises diamantées cylindriques, dans une pièce à main à haute vitesse (Kavo®, Charlotte, Caroline du Nord, États-Unis), en refroidissant avec de l'eau pour obtenir un bloc de dentine. Pesso Reamer pas. 2 (Mani®, Utsunoniya, Tochigi, Japon) dans une pièce à main basse vitesse (Kavo, Charlotte, Caroline du Nord, États-Unis) a été utilisé pour normaliser le diamètre interne (0,9 mm) des canaux radiculaires. Les blocs de dentine ont été soumis à l'irrigation par ultrasons (EndoActivator, Dentsply, Weybridge, Surrey, Royaume-Uni) en utilisant 5,25% d'hypochlorite de sodium (Clorox®, Oakland, Californie, États-Unis), puis 17% d'EDTA (Calasept®, Nordiska Dental, Ängelholm, Skåne Pays , Suède) pendant une minute pour enlever la couche frottis. Les blocs de dentine ont été soigneusement rincées avec une solution saline stérile après chaque irrigation. Ensuite, les blocs de dentine ont été soumis à une stérilisation par autoclave (LTE®, Oldham, Lancashire, Royaume-Uni) pendant 20 minutes à 121 ° C.
Les surfaces extérieures des spécimens étaient recouverts de vernis à ongles pour éviter le contact de la C. albicans de médicament avec la surface externe. Dix boîtes de Pétri contenant de la cire avec une surface plane ont été préparées, et la surface stérilisées en utilisant 70% d'éthanol et séché à l'air dans une enceinte de sécurité biologique stérile avant utilisation. Les blocs de dentine ont été jusqu'à redressés, et les extrémités apicales ont été fixés sur les boîtes de Pétri avec de la cire, avec un petit carré mince bande de plastique stérilisée oblitérer l'orifice apical pour empêcher toute cire ramollie de pénétrer dans les canaux
. Ensemencement des blocs dentinaires avec C. albicans
C. albicans
ont été mises en suspension dans 20,0 ml de bouillon SD. La suspension cellulaire a été ajustée pour correspondre à la turbidité de 1,5 × 10 [8] UFC ml
-1 (équivalent à 0,5 McFarland standards). L'inoculum fongique a été transféré dans les blocs de dentine avec l'utilisation de 5,0 seringues stériles mL (Terumo®, Somerset, New Jersey, États-Unis) avec des aiguilles de calibre 30 (Terumo, Somerset, New Jersey, États-Unis) dans une hotte à flux laminaire stérile. La partie coronale des blocs de dentine ont été ensuite scellé immédiatement d'utiliser Parafilm (Parafilm M®, Marque, Wertheim, Bade-Wurtemberg, Allemagne). Les blocs de dentine ont été incubées à 37 ° C pendant 21 jours, avec renouvellement de C. albicans
tous les 3 jours.
Placement de médicaments intracanalaires
Après la période d'inoculation, le canal de blocs de dentine ont été irrigués avec des stériles une solution saline et séchée avec des pointes en papier stériles. Les 90 blocs de dentine ont été divisés en cinq groupes, selon le médicament intracanalaire utilisé, comme suit:
Groupe I (20 spécimens): 95% propolis (Stakich, Royal Oak, Michigan, États-Unis) a été mélangée avec une solution saline dans un rapport de 1,5: 1 (poids /volume) pour obtenir une consistance pâteuse
Groupe II (20 spécimens). mélange de poids égal (1: 1: 1) de terrain métronidazole ( UPL, Ankleshwar, Gujarat, Inde), la ciprofloxacine (Apex Pharmacy, Petaling Jaya, Selangor, Malaisie) et la minocycline (YSP, Kuala Lumpur, Selangor, Malaisie) a été mélangée avec une solution saline stérile dans un rapport de 1,5: 1 (poids /volume) pour obtenir une consistance pâteuse
Groupe III (20 échantillons):.. gel de chlorhexidine à 2% (Consepsis V®, Ultradent, South Jordan, Utah, USA)
Groupe IV (20 échantillons): non-réglage Ca (OH) 2 (Produits Dentaires SA, Vevey, Vaud, Suisse) a été mélangé avec du propylène glycol dans un rapport de 1,5: 1 (poids /volume) pour obtenir un consistance pâteuse.
groupe V (10 spécimens) solution saline stérile adapté groupe témoin non traité pour fournir des données de ligne de base sur la croissance fongique au fil du temps.
Chaque groupe a en outre été divisé en deux sous-groupes: les sous-groupes I (A1 et A2), les sous-groupes II (B1 et B2) des sous-groupes III (C1 et C2) les sous-groupes IV (D1 et D2), et les sous-groupes V (E1 et E2) en fonction des périodes expérimentales .
les médicaments intracanalaires ont été placés dans le canal à l'aide de seringues stériles de 5,0 ml (Terumo®, Somerset, New Jersey, États-Unis) et pointe de l'aiguille de gravure de gel (Kerr®, orange, Californie, États-Unis) jusqu'à ce que les canaux étaient complètement rempli. Suite à la mise en place de tous les médicaments dans le canal à l'intérieur des blocs dentine, les orifices coronales ont tous été scellés avec Parafilm (Parafilm M®, Marque, Wertheim, Bade-Wurtemberg, Allemagne). Les blocs ont été maintenus à 37 ° C en fonction des périodes expérimentales (1 et 7 jours).
Collection de copeaux dentinaires
A la fin des périodes expérimentales, les blocs de dentine ont été retirées des boîtes de Pétri et les canaux ont été irrigués en utilisant une solution saline stérile et les parois du canal ont été nettoyés à l'aide des conseils à ultrasons pour assurer l'élimination complète du médicament. Les canaux ont été séchés avec des pointes de papier stériles. Des échantillons de copeaux de dentine ont été recueillies après jour 1 médicament pour A1, B1, C1, D1 et E1, et après le jour 7 pour A2, B2, C2, D2 et E2.
Copeaux dentinaires ont été recueillies à l'aide Pesso Reamer (Mani®, Utsunoniya, Tochigi, Japon) Taille pas. 4 (diamètre 1,3 mm), suivie d'une taille non. 6 (diamètre 1,7 mm), dans une pièce à main basse vitesse (Kavo®, Charlotte, Caroline du Nord, États-Unis). Ces tailles des alésoirs pesso permettent une profondeur de 200 um et 400 um de copeaux dentinaires à collecter (Figure 1). Copeaux dentinaires ont été immédiatement transférés dans un tube de micro-centrifugeuse (Axygen®, Corning, Tweksburry, Massachusets, USA) contenant 1,0 ml de bouillon de SD stérile. La figure 1 est une présentation schématique de la section transversale de la dentine du canal radiculaire et à la sélection de la taille du foret. Pesso Reamer (Mani®, UT, Japon) taille no. 4 (diamètre 1,3 mm) et non. 6 (1,7 mm) a permis une profondeur de 0,2 mm (200 um) et 0,4 mm (400 um) de copeaux dentinaires à recueillir un canal de 0,9 mm de diamètre, respectivement.
Évaluation antimicrobienne
Un micro pointe stérile a été utilisé pour prendre 0,1 ml de bouillon contenant des copeaux dentinaires, transférés à un autre tube contenant 0,9 ml de bouillon de SD stérile. Le contenu de chaque tube a été dilué en série de 10 -1 jusqu'à 10 -7. 300 ul de copeaux dilué a été étalé uniformément à l'aide d'une tige de verre en forme de L et tripliquée à trois reprises. Ces plaques ont été incubées pendant 24 heures à 37 ° C et les colonies ont été comptées et les lectures ont été compilés.
Analyse statistique
La version du logiciel informatique SPSS 18.0 (SPSS Inc., Chicago, Illinois, États-Unis) a été utilisé pour effectuer analyses statistiques. Les valeurs ont été analysées à l'aide non-paramatric Kruskal-Wallis et Mann-Whitney-U tests pour comparer la réduction médiane de Candida albicans
entre tous les médicaments dans le canal. Les valeurs de probabilité de P & lt; 0,05 ont été fixés comme référence pour des résultats statistiquement significatifs.: Résultats
Le groupe de contrôle a montré C. albicans viables
à tout moment expérimentaux, ce qui confirme l'efficacité de la méthodologie.
Non-paramétrique test de Kruskal Wallis ont montré des différences de signification entre les médicaments dans le canal et une solution saline sur les deux jours et à différentes profondeurs (tableau 1) .Table 1 comparaison des CFU entre les médicaments testés et une solution saline
N
jour 1
jour 7
200 um
400 um
200 um
400 μm
Median
Q3-Q1
Median
Q3-Q1
Median
Q3-Q1
Median
Q3-Q1
Saline
5
3.49×107
1.90×107
3.40×105
2.46×105
2.08×107
8.95×106
3.06×105
96500.00
Propolis
10
4695.00
4.95×105
1.15×105
5.33×105
896.00
53835.21
8426.67
15389.54
TAP
10
1502.25
3520.61
1052.63
13013.58
28.75
24.13
59.25
153.21
CHX
10
4.25
172.83
3.25
76.67
21.75
101.13
1.00
25.00
Ca(OH)2-PG
10
865.00
2107.88
207.83
461.91
29.25
423.42
6.25
107.75
gamme médiane et interquartile de tous les groupes sont également présentés.
Le tableau 2 montre la médiane et le pourcentage de différence de différence dans CFU entre les différents médicaments dans le canal. Lorsque les résultats ont été comparés au groupe témoin non traité (solution saline stérile), la p-valeur indiquée peut être attribuée directement à l'effet des médicaments tested.Table 2 de Mann-Whitney U-test pour étudier la différence entre les divers médicaments dans le canal et CFU
jour de
jour 1
7
200 um
400 um
200 um
400 um
réduction médian en CFU (%)
valeur p
réduction médian en CFU (%)
valeur de p
réduction médian en CFU (%)
valeur p
réduction médian en CFU (%)
valeur p
Saline vs Propolis
3.49x107 (99,98%)
0,003
2.25 × 105 (66,18%)
0,096
2,08 × 107 (99,99%)
0,003
2,98 × 105 (97,25%)
0,003
Saline vs TAP
3.49x107 (99,99%)
0,003
3,39 × 105 (99,69%)
0,013
2,08 × 107 (99,99%)
0,003
3,06 × 105 (99,98%)
0,003
Saline vs CHX
3.49x107 (99,99%)
0,003
3,40 × 107 (99,99%)
0,003
2,08 × 107 (99,99%)
0,003
3,06 × 105 (99,99%)
0,003
Saline vs Ca (OH) 2-PG
3.49x107 (99,99%)
0,003
3,40 × 105 (99,99%)
0,003
2,08 × 107 (99,99%)
0,003
3,06 × 105 (99,99%)
0,003
Propolis vs TAP
3192,75 (68%)
0,102
1.14 × 105 (99,08%)
0,021
867,25 (96,79%)
0,001
8.367,42 (99,30%)
0,001
Propolis vs CHX
4.690,75 (99,91%)
0,001
1,15 × 105 (99,99%)
0.000
874,25 (97,57%)
0,003
8.425,67 (99,99%)
0.000
Propolis vs Ca (OH ) 2-PG
3.830,00 (81,58%)
0,047
1,15 × 105 (99,82%)
0,001
866,75 ( 96,74%)
0,012
8.420,42 (99,93%)
0,001
TAP vs CHX
1498.00 (99,71% )
0,004
3.347,78 (95,09%)
0,001
7,00 (24,34%)
0,965
58.25 (98.31%)
0,004
TAP vs Ca (OH) 2-PG
637,25 (42,42%)
0,847
844,80 (80,24%)
0,027
0,50 (1,71%)
0,627
50.00 (84.39%)
0,102
CHX vs Ca (OH) 2-PG
860,75 (99,51%)
0,002
204,58 (98,44%)
0,004
7,50 (25,64%)
0,354
5,25 (84,00%)
0,157
* valeur p & lt; 0,05 a été considérée comme statistiquement significative
*** valeur de p & lt. . 0,005 a été considérée comme hautement significative
réduction Fungal à 200 um dentinaire profondeur de tubules
Le jour 1, tous les médicaments ont montré une réduction hautement significative des champignons (p & lt; 0,005) en comparaison avec le témoin (du sérum physiologique stérile). Lorsque les quatre médicaments ont été comparés les uns aux autres, CHX a montré la meilleure activité antifongique (p & lt; 0,005), suivi par du Ca (OH ) 2 avec le propylène glycol, qui est meilleure que la propolis (p & lt; 0,005), mais aucune différence TAP (p & gt; 0,05). TAP n'a montré aucune différence significative par rapport à la propolis (p & gt; 0,05) (figure 2). Figure 2: Comparaison de la réduction du pourcentage médian des médicaments intracanalaires CFU à 200 um profondeurs de tubules dentinaires le jour 1 et le jour 7. (valeur p & lt; 0,05 = *, p & lt; 0,01 = **, p & lt; 0,001 = ***) .
au jour 7, tous les médicaments ont montré une réduction hautement significative des champignons (p & lt; 0,005) par rapport au témoin (sérum physiologique stérile). Lorsque les quatre médicaments ont été comparés les uns aux autres, CHX a montré de différence hautement significative seulement à propolis (p & lt; 0,005), sans différence significative de Ca (OH) 2 avec le propylène glycol et la TAP. Ca (OH) 2 avec le propylène glycol a montré de différence significative de propolis (p & lt; 0,05), sans différence significative avec TAP (p & gt; 0,05). TAP a également montré de différence très significative à la propolis (p & lt; 0,005). (Figure 2)
réduction Fungal à 400 um dentinaire profondeur de tubule
Au jour 1, par rapport à la commande (solution saline stérile), tous les médicaments ont montré très réduction significative fongique (p & lt; 0,005) sauf propolis (p & gt; 0,05). Lorsque les quatre médicaments ont été comparés les uns aux autres, CHX a été le meilleur, avec une différence hautement significative par rapport aux trois autres médicaments (p & lt; 0,005). Ca (OH) 2 avec le propylène glycol a montré des résultats significativement meilleurs que de TAP (p & lt; 0,05) et très significative à la propolis (p & lt; 0,005). TAP était significativement meilleure que la propolis (p & lt; 0,05) (figure 3). Figure 3 Comparaison de la réduction du pourcentage de la médiane médicaments dans le canal CFU à 400 um profondeurs de tubules dentinaires le jour 1 et le jour 7. (valeur p & lt; 0,05 = *, p & lt; 0,01 = **, p & lt; 0,001 = ***) .
au jour 7, par rapport au témoin (sérum physiologique stérile), tous les médicaments ont montré une réduction hautement significative des champignons (p & lt; 0,005). Lorsque les quatre médicaments ont été comparés les uns aux autres, CHX a montré différence hautement significative (p & lt; 0,005) à la TAP et de la propolis, mais aucune différence significative de Ca (OH) 2 avec le propylène glycol (p & gt; 0,05). Discussion de
(figure 3) Ca (OH) 2 avec le propylène glycol et le TAP montré très significative différence Propolis (p & lt; 0,005), mais aucune différence significative entre eux (0,05 p & gt). l'utilisation d'un médicament intracanalaire biocompatible avec des propriétés antimicrobiennes entre les rendez-vous peut éradiquer complètement les micro-organismes du système de canal et pourrait augmenter de manière significative le succès du traitement du canal radiculaire [28]. Le modèle in vitro mis au point par Haapasalo & amp; Orstavik a été utilisé pour évaluer l'efficacité de médicaments endodontiques dans la désinfection des tubules [27]. Dans la présente étude, ce modèle a été modifié pour inclure des dents humaines naturelles comme des spécimens, ce qui a fourni une meilleure simulation des paramètres cliniques. Sectionnement et mise en forme du canal ont été maintenus à un niveau de 6,0 mm de hauteur et 0,9 mm de diamètre pour assurer de placer une quantité uniforme de champignons lors de l'inoculation, et médicaments dans le canal. De plus, l'analyse quantitative des champignons dans les tubules dentinaires a été fait afin de définir un pourcentage de réduction des UFC dans dentine infectée avant et après l'application de médicaments dans le canal. C. albicans
a été choisie en raison de la présence de l'organisme dans 7-18% des cas de parodontite apicale persistants [4].
Dans la présente étude, le gel de chlorhexidine 2% était efficace pour C. albicans
à des profondeurs de tubules dentinaires de 200 pm et 400 pm le jour 1 et le jour 7 l'inhibition fongicide ont été trouvés pour être statistiquement significative. La raison possible pourrait être que, le dosage bactéricide de 2% et la formulation de gel permet de conserver la CHX à proximité des parois du canal radiculaire et tubules dentinaires [29, 30]. Les propriétés de fond innées CHX inhibe la réinfection pendant une durée d'au moins 12 semaines [31, 32]. Le résultat de cette étude est similaire à celle de Vaghela et al.
, Qui a montré que la CHX avait une activité fongicide plus élevée à 200 um et 400 um [12]. Cependant, CHX doit être utilisé avec précaution lors de l'hypochlorite de sodium (NaOCl) a été utilisé comme un canal de racine irrigant précédemment. En effet, la réaction entre NaOCl et CHX conduit à la formation d'un précipité orange-brun, résultant en une couche de boue dentinaire chimique qui couvre les tubules dentinaires et peuvent interférer avec le sceau du remplissage du canal radiculaire. En outre, ce précipité peut être cytotoxique pour les tissus péri-apicales. L'autre limitation inclut l'effet cytotoxique avec les tissus vivants pendant des périodes prolongées, comme l'a démontré dans la littérature [33]. Par conséquent, le rinçage complet du canal radiculaire est obligatoire avant d'utiliser CHX comme médicament intracanalaire.
L'effet fongicide de propolis a été statistiquement significative dans l'élimination de C. albicans
à des profondeurs de tubules dentinaires de 200 pm le jour 1 et aux deux profondeurs le jour 7. Toutefois, la réduction n'a pas été statistiquement significative à la profondeur de 400 pm le jour 1. la raison possible pour l'activité antifongique inférieure de propolis le jour 1, à la profondeur de 400 um pourrait être due au ralentissement du taux de pénétration dans les tubules dentinaires. La propriété de diffusion des médicaments pourrait être améliorée en ajoutant des véhicules tels que le propylène glycol. L'action antifongique de la propolis est due aux présences de flavonoïdes et des acides phénoliques, qui interagissent avec les composés sulfhydryles cellulaires sur la paroi cellulaire. Cela porte préjudice à l'intégrité de la paroi cellulaire de la levure et les résultats dans le détachement de la paroi cellulaire fongique et la réduction de la formation de tube germinatif et la longueur des hyphes. Par conséquent, il inhibe la conversion de la levure mycélien qui empêche finalement la division cellulaire [22, 23]. En outre, les propriétés anti-inflammatoires et anti-oxydantes de la propolis pourrait encore améliorer la cicatrisation du tissu péri-apicale. Cependant, l'application de la propolis doit être évitée chez les patients qui sont connus pour être allergiques au pollen [34].
Hydroxyde de calcium avec du propylène glycol a entraîné une inhibition statistiquement significative de C. albicans
à des profondeurs de tubules dentinaires de 200 um et 400 um au jour 1 et le jour 7. L'hydroxyde de calcium réagit en libérant des ions hydroxyles conduisant à un environnement fortement alcalin qui microorganismes ne peuvent pas survivre. Chimiquement, il endommage la membrane cytoplasmique microbienne, supprime l'activité enzymatique et perturbe le métabolisme cellulaire ou micro-organismes [8]. L'hydroxyde de calcium est médicaments dans le canal les plus largement utilisés, principalement dans les dents avec parodontite apicale. Il dispose de plusieurs propriétés avantageuses, telles que l'effet antimicrobien, la compatibilité des tissus, l'aptitude à induire la formation de tissu minéralisé, l'inactivation de l'endotoxine bactérienne et la capacité à promouvoir la réparation. Cependant, C. albicans
se sont révélés être résistants à elle [7]. Dans la présente étude, l'hydroxyde de calcium a été efficace qui est probablement dû à l'addition d'un véhicule, à savoir le propylène glycol, qui permet la libération d'ions hydroxyle pendant une période plus longue, et améliore la capacité de diffusion de l'hydroxyde de calcium dans les tubules [35] . Le résultat de la présente étude était similaire à l'étude de Vaghela et al.
, Démontré que l'hydroxyde de calcium avec le propylène glycol a une activité antifongique élevée à 200 um et 400 um [10]. Cependant, l'hydroxyde de calcium dans son pH élevé peut provoquer une nécrose des tissus environnants, et l'utilisation à long terme peut augmenter la fragilité de la dentine de racine qui augmente le risque de futures fractures radiculaires cervicales [36] Pâte Triple antibiotique de. Délivré une inhibition statistiquement significative de C. albicans
à des profondeurs de tubules dentinaires de 200 um et 400 um au jour 1 et le jour 7. Triple pâte antibiotique contient minocycline qui inhibe la synthèse des protéines sur les surfaces de ribosome qui pourrait être la raison pour laquelle la propriété antifongique, tandis que le métronidazole et ciprofloxacine peut aider à générer des fibroblastes à la synthèse de la matrice extracellulaire et de collagène et de contribuer à l'élaboration du cadre structurel [16, 37]. pâte antibiotique triple (TAP) a pu pénétrer dans les tubules dentinaires et prouvé efficace contre tous les micro-organismes, anaérobies, des micro-organismes Gram-positives et gram négatives [15]. TAP favorise la guérison, la réparation des tissus périapicaux en plus de créer un environnement aseptique et accélère le développement fonctionnel du complexe de pâte-dentine [38]. Propolis Conclusions de Toutefois, des précautions doivent être prises chez les patients qui sont connus pour être allergique à la tétracycline, et aussi dans les dents antérieures où la décoloration pourrait être causé par minocycline [36]. Était moins efficace que la pâte antibiotique triple, 2 gel de chlorhexidine% et de l'hydroxyde de calcium avec le propylène glycol contre C. albicans
le jour 1 à 400 um de profondeur à l'intérieur des tubules dentinaires, mais tout aussi efficace après 7 jours à deux profondeurs. l'information
Auteurs
Dr Gene Eu Chua, BDS (IMU). Dr Abhishek Parolia, BDS (Hons) (Manipal AHE), MDS (Manipal AHE). Dr Priya Ahlawat, BDS (Manipal AHE), MMedSc (réparatrice) (Sheff). Prof Dr Allan Pau, BDS (Lond), DDPH RCSEng, MSc (Lond), PhD (Lond), FDS RCSEd. Dr Fabian Davamani Amalraj, MSc (Madr), Déclarations
Remerciements PhD (Madr).
Cette étude a été approuvé et soutenu financièrement par le Comité éthique de la recherche et de l'Université Médicale Internationale, Malaisie. (Numéro Grant BDS I01 /2009 (01) 2012). Les auteurs tiennent à remercier le Dr Ankur Barua, Université médicale internationale, la Malaisie, pour sa contribution à l'analyse de données et d'affiner les résultats. De fichiers originaux soumis pour les images
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Les auteurs déclarent qu'ils ont aucun conflit d'intérêts.
Auteurs ' contributions EGC effectué toutes les méthodes, l'analyse des données et rédigé le manuscrit. AP conçu l'étude, a agi comme un démonstrateur pour mener à bien la «partie dentaire» des méthodes, impliqué dans la révision du manuscrit critique, PA a supervisé l'ensemble des progrès de l'étude, AP a contribué à l'analyse des données et l'édition de manuscrits. FDA a été impliqué dans la conception de l'étude, dans la partie de la microbiologie de l'étude et l'édition de manuscrits. Tous les auteurs ont lu et approuvé le manuscrit final.
